Автореферат: Морфофизиологическое обоснование применения биостимуляторов для свиней в биогеохимической провинции с недостаточностью йода

Внимание! Если размещение файла нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам

Результаты исследования динамики изменения содержания АКТГ представлены на рисунке 6.

2.2.8 Динамика изменения содержания йода, активность йодпероксидазы и цитохромоксидазы в щитовидной железе при йодной недостаточности свиней и на фоне разных методов ее коррекции

Концентрация йода в щитовидной железе свиней 1-й контрольной группы в начале опыта составила 192,0 мг%, к концу исследований этот показатель был равен 195,0 мг%. Описываемое значение в щитовидной железе животных опытных групп к началу исследований было ниже, чем в контроле, и колебалось на уровне от 125,0 до 132,0 мг%. Разные варианты внесения йодида калия в организм в комплексе с другими препаратами способствовали его накоплению в щитовидной железе свиней. Этот процесс имел разную степень выраженности. Показатель уровня йода в щитовидной железе свиней 2-й группы увеличился, по сравнению с фоновым значением, лишь в возрастном аспекте до 30-го дня опыта, превысив его в 1,06 раза. Содержание йода в щитовидной железе животных 3, 4, 5, 6, 7 и 8-й групп увеличилось к концу опыта, по сравнению с исходным уровнем, в 1,69 (на 89,0 мг%), в 2,13 (на 149,0 мг%), в 2,30 (на 170,0 мг%), в 2,19 (на 158,0 мг%), в 2,44 раза (на 180,0 мг%) и в 2,40 раза (на 180,0 мг%).

Активность йодпероксидазы в клетках щитовидной железы свиней 1-й контрольной группы не имела заметных колебаний и составила 25,0 и 29,2 нМ/мин/г ткани. При дефиците йода в рационе у свиней активность йодпероксидазы в расчете на 1 г ткани увеличивалась до 38,6- 50,4 нМ/мин/г ткани.

Рисунок 6. Динамика изменения содержания АКТГ (а) и ТТГ (б) в крови (обозначения те же, что и на рис. 1)

Разные способы внесения йодида калия в комплексе с иммуностимуляцией и введением в рацион цеолитов, сапропеля и пробиотика способствовали снижению активности йодпероксидазы. К концу опыта значение данного показателя уменьшилось, по сравнению с фоновым уровнем, по 3, 4, 5, 6, 7 и 8-й группам, на 17,4; 18,8; 24,2; 23,12; 27,27 и 24,3 нМ/мин/ г ткани.

Активность цитохромоксидазы в митохондриях щитовидной железы свиней 1-й контрольной группы находилась в пределах от 10,50 и 12,0 мкМ/мин/г ткани. Описываемый показатель в ткани щитовидной железы животных 2- 8-й групп, при недостатке йода, к началу опытов, был выше, чем в контроле на 5,1-6,7 мкМ/мин/ г ткани. Проведенные лечебно-профилактические манипуляции с животными 3-8-й групп способствовали снижению ее значения. Так, активность цитохрооксидазы в щитовидной железе свиней в конце опытов уступала фоновому показателю по 3-й группе на 3,3 мкМ/мин/ г ткани, по 4, 5, 6, 7 и 8-й группам на 5,07; 6,23; 5,66; 7,03 и 6,92 мкМ/мин/г ткани.

Повышение активности йодпероксидазы и цитохромоксидазы в митохондриях щитовидной железы при понижении ее функциональной активности следует рассматривать как компенсаторную реакцию на недостаточность йода в рационе.

2.2.9 Состояние микробной экологии дыхательных путей свиней при йодной недостаточности и на фоне разных методов ее коррекции

Содержание негемолитических стрептококков в носовой полости свиней 2-8-й групп к началу исследований было снижено на 12,1- 12,5 КОЕ/мл. Уровень негемолитических стрептококков у животных 2-й группы интенсивно понижался и уступал к 120-му дню фоновому и контрольному показателям в 32,4 и 55,8 раза.

Инъекция йодида калия внутрь и, особенно, аэрозольно (3 и 4-я группы) способствовала некоторому повышению уровня негемолитических стрептококков в носовой полости свиней. Однако при этом уровень негемолитических стрептококков в носовой полости свиней описываемых групп оставался ниже их значений в контроле и уступал им на эти сроки исследований. Максимальная активизация их регистрировалась у свиней 7 и 8-й групп. Описываемый показатель увеличился, по сравнению с фоновым значением, на 10, 30, 60 и 120-ые дни опыта, соответственно в 1,41 и 1,31; 1,64 и 1,47; 1,86 и 1,63 и в 1,70 и 1,56 раза.

Уровень бета-гемолитических стрептококков в носовой полости свиней 2- 8-й опытных групп, к началу исследований, был повышен на 6,10-7,2 КОЕ/мл. Содержание бета-гемолитических стрептококков в носовой полости свиней 2-й группы продолжало интенсивно повышаться и превысило фоновое и контрольное значение к 10, 30, 60 и 120-ым дням опыта на 3,50 и 10,5 КОЕ/мл; 9,1 и 15,4 КОЕ/мл; 16,2 и 23,7 КОЕ/мл; 25,0 и 31,7 КОЕ/мл.

Активность бета-гемолитических стрептококков в носовой полости свиней опытных групп в процессе опытов снижалась. Менее выраженным этот процесс был у свиней 3 и 4-й групп. Более интенсивный процесс снижения уровня бета-гемолитических стрептококков регистрировался в носовой полости животных 7 и 8-й групп. При этом уровень бета-гемолитических стрептококков в носовой полости свиней 7-й группы с 30-го дня опыта соответствовал значению контроля, а показатели животных 8-й группы значительно приблизились к нему.

Данные по исследованию динамики изменения содержания Staphylococcus saprophiticus (а), Staphylococcus aureus (б), Escherichia coli (в), Prоteus vulgaris (г) в носовой полости свиней представлены на рисунке 7.

2.2.10 Естественный микробиоценоз кишечника свиней при йодной недостаточности и разных методах ее коррекции

Фоновый уровень бифидофлоры в кишечнике животных опытных групп при йодной недостаточности был снижен в 1,51-1,64 раза (на 3,7-4,3 lg КОЕ/г).

Данный процесс в кишечнике животных 2-й группы прогрессировал. Если к началу опытов описываемый показатель уступал контрольной цифре в 1,57 раза (на 4,0 lg КОЕ/г), то к 10, 30, 60 и 120-ым дням исследований эта разница, в сторону снижения бифидобактерий, составила в 1,78; 1,86; 2,13 и 2,74 раза.

Рисунок 7. Динамика изменения содержания Staphylococcus saprophiticus (а), Staphylococcus aureus (б), Escherichia coli (в), Prоteus vulgaris (г) в носовой полости, в КОЕ/мл (обозначения те же, что и на рис. 1)

Добавление в рацион поросят 3-й группы йодида калия (per/os) и в 4-й группе аэрозольная инъекция йодида калия способствовали некоторой активизации бифидобактерий. Значительное увеличение содержания бифидобактерий в кишечнике отмечалось у поросят 5 и 6-й групп. Максимального уровня бифидобактерии достигли в кишечнике поросят 7 и 8-й групп. Здесь к 10 и 30-ым дням опыта уровень бифидобактерий превысил фоновое значение в 1,87 и 1,76 (на 6,0 и 5,4 lg КОЕ/г) и в 2,03 и 1,94 раза (на 7,1 и 6,7 lg КОЕ/г). Максимальный уровень бифидобактерий регистрировался к 60-му дню, он превышал фоновый показатель в 2,22 и 2,03 раза (на 8,4 и 7,3 lg КОЕ/г). Подобным образом изменялась динамика содержания лактобацилл в кишечнике свиней.

Уровень условно-патогенных эшерихий в кишечнике животных опытных групп к началу исследований был повышен в 1,30 и 1,39 раза (на 2,5 и 3,2 lg КОЕ/г). Содержание эшерихий в кишечнике животных 2-й группы имело тенденцию к дальнейшему активному увеличению, по сравнению с контрольным уровнем: к 10, 30, 60 и 120-ым дням опыта в 1,72 (на 5,6 lg КОЕ/г); 1,89 (на 7,0 lg КОЕ/г); 2,43 (на 11,0 lg КОЕ/г) и 2,42 раза (на 11,5 lg КОЕ/г). Уровень эшерихий в кишечнике поросят 3 и 4-й групп лишь незначительно снизился по сравнению с его фоновым уровнем. Более выраженный процесс снижения числа эшерихий регистрировался в кишечнике свиней и 6-й групп. Однако уровень эшерихий в кишечнике поросят этих групп продолжал превышать контрольный показатель. Значительно приблизилось содержание эшерихий к физиологическим нормам в кишечнике животных 7 и 8-й групп. Подобным образом изменялась в кишечнике динамика стафилококков.

Результаты исследования динамики изменения содержания клостридий и вульгарного протея в кишечнике свиней представлены на рис. 8.

Фоновое значение микрогрибов из рода Candida в кишечнике животных опытных групп было повышено в 1,52 - 1,64 раза (2,6-3,2 lg КОЕ/г).

Рисунок 8. Динамика изменения содержания клостридий и вульгарного протея в кишечнике поросят (lg КОЕ/г) (обозначения те же, что и на рис. 1)

По 2-й группе микрогрибы из рода Candida в процессе опыта имели тенденцию к дальнейшему активному размножению. Их содержание увеличилось, по сравнению с фоновым и контрольным уровнем, к 120-му дню опыта в 1,93 и 3,0 раза (на 7,1 и 9,8 lg КОЕ/г). Содержание микрогрибов из рода Candida в кишечнике свиней 3 и 4-й групп до 30-го дня опыта, а у животных 5 и 6-й групп до 10-го дня продолжало превышать фоновое значение. В последующие сроки опыта наблюдалась тенденция к их снижению, однако показатели животных этих групп превышали контрольные цифры.

Снижение в кишечнике содержания микроскопических грибов из рода Candida, по сравнению с контрольным значением, регистрировалось лишь у животных 7 и 8-й групп. Здесь баланс этих микрогрибов установился к 60-му дню опыта. К этому сроку исследований описываемый показатель снизился и уступал фоновому и контрольному уровням по седьмой группе в 1,92 и 1,28 раза (на 3,7 и 1,1 lg КОЕ/г), по восьмой группе в 1,84 и 1,16 раза (на 3,7 и 0,7 lg КОЕ/г).

В кишечнике здоровых свиней 1-й контрольной группы, содержащихся в условиях йодного баланса в кормах, микрогрибы Aspergillus в кишечнике отсутствовали. Однако в кишечнике животных опытных групп уже к началу опытов выделялось содержание микрогрибов рода Aspergillus в пределах от 1,6 до 1,9 lg КОЕ/г. Описываемый показатель в кишечнике поросят 2-й группы в процессе опыта имел тенденцию к дальнейшему увеличению: к 10, 30, 60 и 120-ым дням исследований - в 1,5 (на 0,9 lg КОЕ/г), в 2,0 (на 1,8 lg КОЕ/г), в 2,72 (на 3,1 lg КОЕ/г) и в 2,89 раза (на 3,4 lg КОЕ/г).

Содержание микрогрибов рода Aspergillus в кишечнике поросят 3 и 4-й групп к 10-му дню несколько повысилось, по сравнению с фоновым значением: в 1,05 и 1,12 раза (на 0,1 и 0,2 lg КОЕ/г). В последующие сроки опыта данный показатель в кишечнике животных описываемых групп начал снижаться и уступал фоновому значению к 30, 60 и 120-ым дням в 1,73 и 2,0 (на 0,8 и 0,8 lg КОЕ/г), в 1,9 и 1,77 (на 0,9 и 0,7 lg КОЕ/г) и в 1,58 и 1,6 раза (на 0,7 и 0,6 lg КОЕ/г).

В кишечнике животных 5,6,7 и 8-й групп содержание микрогрибов рода Aspergillus с 10-го дня исследований снижалось, этот процесс имел разную степень проявления по группам и был более выражен в кишечнике свиней 7 и 8-й групп. В кишечнике животных этих групп микрогрибы из рода Aspergillus не обнаруживались с 60-го дня, а восьмой группы - с 30-го дня исследований. Эта тенденция сохранялась до конца опыта.

Содержание микроскопических грибов из рода Penicillium в кишечнике животных1-й контрольной группы не выявлялось за весь период опытов. Однако в кишечнике животных всех опытных групп в начале исследований микрогрибы Penicillium выделялись в пределах от 2,6 до 2,8 lg КОЕ/г. Содержание микрогрибов Penicillium в кишечнике животных 2-й группы, в процессе опыта, имело тенденцию к дальнейшему постепенному повышению. Их значения увеличились, по сравнению с фоновым показателем, к 10, 30, 60 и 120-ым дням опыта в 1,18 (на 0,5 lg КОЕ/г), в 1,44 (на 1,2 lg КОЕ/г), в 1,63 (на 1,7 lg КОЕ/г) и в 2,11 раза (на 3,0 lg КОЕ/г).Уровень микрогрибов Penicillium в кишечнике свиней 3 и 4-й групп до 10-го дня опыта повышался, превысив фоновое значение 1,12 и 1,07 раза (на 0,3 и 0,2 lg КОЕ/г). В последующие сроки опыта содержание микрогрибов в кишечнике животных описываемых групп имело тенденцию к снижению. Максимальное снижение микрогрибов из рода Penicillium наблюдалось в кишечнике животных 7 и 8-й групп. Описываемый показатель здесь снизился, по сравнению с фоновым значением, на 10-й день исследований в 1,65 и 1,3 раза (на 1,1 и 0,6 lg КОЕ/г), на 30-й день - в 9,33 и 5,2 раза (на 2,54 и 2,1 lg КОЕ/г). На 60-й день опыта микрогрибы из рода Penicillium не выделялись из кишечника свиней 7-й группы, а на 120-й день -7 и 8-й групп.

2.2.11 Изменения показателей прироста живой массы и сохранности свиней при йодной недостаточности и разных методах ее коррекции

Живая масса поросят контрольной группы в начале опытов (2-х месячные) составила 17,0 кг. Данный показатель у животных опытных групп был понижен до 14,8-15,3 кг. Контрольные взвешивания подсвинков в возрасте 4-х и 6-ти месяцев показали значительные различия показателей прироста живой массы по группам. У животных 4-х и 6-ти месячного возраста прирост живой массы по 3, 4, 5, 6, 7 и 8 группам был выше его значения у свиней второй группы в 1,41 и 1,27 раза (на 10,3 и 13,8 кг), в 1,37 и 1,24 (на 9,5 и 12,7 кг), в 1,5 и 1,35 (на 12,8 и 18,2 кг), в 1,43 и 1,32 (на 10,5 и 16,6 кг), в 1,73 и 1,45 (на 18,5 и 23,5 кг) и в 1,68 и 1,42 раза (на 17,3 и 21,7 кг). Значения среднесуточного прироста живой массы свиней 3, 4, 5, 6, 7 и 8-й групп в 4-х и 6-ти месячном возрасте превысили показатель животных второй группы на 176,6 и 117,5 г, на 156,6 и 105,0 г, на 220,0 и 155,0 г, на 185,0 и 140,1 г, на 313,3 и 198,4 г, на 290,0 и 185,9 г.

При этом показатели прироста и среднесуточного прироста живой массы животных 3, 4, 5, и 6-й групп уступали его значению у свиней контрольной группы, а данные свиней седьмой и восьмой групп были выше контрольных цифр в 1,1 раза (на 2,8 кг и 46,7 г) и в 1,05 раза (на 1,1 кг и 23,4 г).

Сохранность животных за период опытов в контрольной группе составила 87,5%, во 2-ой группе -56,2%, в 3-ей группе -75,0%, в 4-ой группе -81,0%, в 5-ой группе -87,5%, в 6-ой группе -93,7%, в 7-ой группе -100%, в 8-ой группе -93,7%.

ВЫВОДЫ

1. Установлен дефицит йода в воде и кормах, используемых для свиней в районах республики Башкортостан, относящихся к биогеохимической провинции зоны Среднего Урала.

2. Йодная недостаточность свиней приводит к развитию в организме вторичных иммунодефицитов, проявляющихся снижением показателей естественной резистентности, затормаживанием фагоцитарной активности лейкоцитов, уменьшением содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов, Т-хелперов, В-ЕАС-лимфоциов в крови, лимфатических узлах, селезенке, Т-лимфоцитов в тимусе; активизацией реакции Т-супрессоров; уменьшением количества лимфоцитов, реагирующих с МКА серии ИКО-10 и ИКО-124; затормаживанием продукции в организме Ig G и Ig А.

3. Недостаток йода в организме свиней сопровождается глубокими морфологическими изменениями в центральных и периферических органах иммуногенеза, характеризующимися деструктивными изменениями площадей Т- и В-зависимых зон: в тимусе - уменьшение площади коркового вещества , при расширении мозгового; в глубоком паховом лимфатическом узле - уменьшение площади, занимаемой лимфатическими узелками без светлых и со светлыми центрами, мякотными тяжами, паракортикальной зоной при расширении коркового плато; в селезенке - уменьшение площади лимфатических узелков без светлых центров, периваскулярных лимфоидных муфт и исчезновение лимфатических узелков со светлыми центрами;

Источник: https://otherreferats.allbest.ru/download/865080/