Материал: Тонкослойная хроматография аминокислот в мицеллярных подвижных фазах на силикагеле

840

УДК 543.544.943.3-135

Тонкослойная хроматография аминокислот в мицеллярных подвижных фазах на силикагеле

Ворожейкин С.Б., Башко Е.С., Штыков С.Н.

ФГБОУ ВПО Саратовский государственный университет им. Н.Г. Чернышевского, Саратов

Поступила в редакцию 30.07.2011 г.

Аннотация

Методом тонкослойной хроматографии на пластинках «Сорбфил» с полярной неподвижной фазой изучено влияние природы и концентрации мицелл поверхностно-активных веществ, ионной силы раствора и рН среды на хроматографическое поведение 17 аминокислот. Установлены основные закономерности хроматографического поведения различных групп аминокислот в мицеллярных подвижных фазах (МПФ). Даны примеры применения МПФ для разделения аминокислот в коммерческих препаратах.

Ключевые слова: тонкослойная хроматография, аминокислоты, разделение, модификация подвижной фазы

The effect of the nature and concentration of surfactant micelles as well as ionic strength and pH on the TLC chromatographic behavior of 17 aminoacids on polar Sorbfil plates was studied. The main regularities of aminoacids chromatographic behavior in micellar mobile phases (MMP) were established. The examples of application of MMP for separation of aminoacids in commercial preparations were given.

Keywords: thin-layer chromatography, silica gel stationary phase, aminoacids, separation, micellar mobile phases

Введение

Аминокислоты, являясь составными частями пептидов, белков, некоторых ферментов и других физиологически-активных соединений, служат основными компонентами живых организмов и играют важнейшую роль в их функционировании. Часть аминокислот живые организмы синтезируют сами, другие (незаменимые) получают с пищей. Аминокислоты, необходимые для животных и человека, получают также промышленным биосинтезом, используя их для производства лекарственных веществ и различных биологически-активных добавок (БАДов) [1-3]. Для анализа объектов, содержащих аминокислоты, чаще всего применяют методы высокоэффективной жидкостной [4], ионообменной [5] хроматографии или капиллярного электрофореза [6], позволяющие совмещать в одном аналитическом цикле разделение и определение составляющих их компонентов.

Необходимость контроля качества большого ассортимента коммерческих препаратов БАДов стимулирует разработку простых и быстрых методов разделения,

Ворожейкин и др. / Сорбционные и хроматографические процессы. 2011. Т. 11. Вып. 6

841

идентификации и количественного определения составляющих их аминокислот. Одним из таких методов является тонкослойная хроматография (ТСХ) [7]. Преимуществами ТСХ являются простота, экспрессность, дешевизна и возможность одновременного анализа большого числа проб. Показано, что в более чем 90 процентах работ для разделения аминокислот методом ТСХ используют пластинки с прямой фазой на основе силикагеля [8, 9].

В связи с тем, что аминокислоты в растворах существуют в виде одно- и двухзарядных анионов и катионов, цвиттерионов или незаряженных частиц, содержат гидрофобные и гидрофильные группы, для их разделения применяют большое число разнообразных, часто токсичных или резко пахнущих подвижных фаз (ПФ) [7-9]. Новыми ПФ в этом плане являются мицеллярные подвижные фазы (МПФ) на основе поверхностно-активных веществ (ПАВ), впервые предложенные для аминокислот Армстронгом [10-13]. В некоторых случаях растворы ПАВ используют также для импрегнирования неподвижной фазы [14,15]. Поскольку в мировой литературе по ТСХ аминокислот имеется всего несколько публикаций, посвященных применению мицеллярных ПФ для их разделения, причем в основном на обращенной неподвижной фазе, нами более детально изучено влияние природы и концентрации мицелл ПАВ, а также ионной силы раствора и рН среды на хроматографическое поведение 17 представителей, относящихся к группам гидрофильных, незаряженных и гидрофобных аминокислот.

Эксперимент

Хроматографирование проводили методом восходящей ТСХ в стандартных герметичных камерах производства ЗАО «Сорбполимер», г. Краснодар. Использовали пластинки «Сорбфил» (сорбент силикагель СТХ-1А, зернение 5-17 мкм, толщина слоя 110 мкм, размер пластинки 100х100 мм), ЗАО «Сорбполимер». Детектирование и количественную обработку хроматограмм проводили на видеоденситометре “Сорбфил”, ЗАО «Сорбполимер».

Для приготовления подвижных фаз использовали катионные (хлорид цетилпиридиния (ЦП)), анионные (додецилсульфат натрия (ДДС)) и неионные (тритон Х-100 (ТХ-100)) ПАВ фирмы Merck с содержанием основного вещества более 99%. Использовали следующие аминокислоты: глицин (Gly), аланин (Ala), валин (Val), лейцин (Leu), изолейцин (Ile), фенилаланин (Phe), триптофан (Trp), а также метионин (Met) и пролин (Pro), которые можно отнести к гидрофобным, поскольку углеводородный радикал аминокислоты не содержит ионизируемых групп. Представителями незаряженных при рН 6-7 аминокислот, способных образовывать водородную связь с молекулами воды и спиртами, были серин (Ser), треонин (Thr), тирозин (Tyr), цистеин (Cys), глутамин (Gln), аспарагин (Asn). Гидрофильными двухзарядными анионами являлись аспарагиновая (Asp), глутаминовая (Glu) кислоты, а двухзарядными катионами – лизин (Lys), аргинин

(Arg), гистидин (His).

Стандартные растворы 17 аминокислот в водно-этанольной (1:1) среде (1мг/мл) готовили по точной навеске. Растворы аминокислот (1-2 мкл) наносили микрошприцем на стартовую линию хроматографической пластинки, которую после высушивания нанесенного образца помещали в камеру, предварительно насыщенную парами подвижной фазы. После хроматографирования и проявления пластин раствором нингидрина в ацетоне пластинки сушили в течение 10 мин при 90 °С, охлаждали на воздухе, рассчитывали значения Rf аминокислот, а также

Ворожейкин и др. / Сорбционные и хроматографические процессы. 2011. Т. 11. Вып. 6

842

параметры эффективности разделения (число теоретических тарелок (N) и эффективную высоту теоретической тарелки, ВЭТТ (H)) и селективность (α). Ионную силу раствора создавали раствором хлорида натрия. Кислотность раствора создавали уксусно-ацетатным буферным раствором, приготовленным из уксусной кислоты (0.1 моль/л) и ацетата натрия (0.1 моль/л) (рН: 2,7; 2,9; 4,8; 5,2), а так же аммиачным буферным раствором, приготовленным из аммиака (0.1 моль/л) и хлорида аммония (0.1 моль/л) (рН: 10,4).

Обсуждение результатов

Влияние природы ПАВ. Известно, что подвижность сорбатов в мицеллярной ТСХ определяется способностью мицелл солюбилизировать и переносить разделяемые соединения [10]. Солюбилизация, в свою очередь, определяется гидрофобными, электростатическими и донорно-акцепторными взаимодействиями мицелл с компонентами разделяемой смеси. Поскольку молекулы аминокислот содержат одновременно положительно и отрицательно заряженные, а также гидрофобные группы, их солюбилизация должна сильно зависеть от природы ПАВ, что и наблюдалось в эксперименте. Установлено, что величина Rf всехнейтральных и гидрофобных аминокислот в присутствии мицелл ДДС близка к единице, т.е. их смеси не разделяются. Гидрофильные аминокислоты, наоборот, имеют различные Rf; особенно хорошо делятся аргинин и лизин, способные взаимодействовать с отрицательно заряженной мицеллой ДДС как за счет электростатических, так и гидрофобных взаимодействий. В ПФ на основе мицелл катионного ЦП, наоборот, не делятся гидрофильные аминокислоты, а нейтральные и гидрофобные имеют различные величины Rf. В мицеллярных ПФ на основе Тритона Х-100 удается разделить только гидрофобные аминокислоты, которые, по-видимому, лучше солюбилизируются неионными мицеллами за счет преимущественно гидрофобных взаимодействий. Некоторые хроматографические характеристики аминокислот в мицеллярных ПФ представлены в табл.1.

Влияние концентрации мицелл ПАВ. Влияние концентрации мицелл ПАВ показано на примере ДДС и лизина с аргинином, разделяемых в этой мицеллярной ПФ (рис. 1). Видно, что с увеличением концентрации ДДС подвижность обеих аминокислот растет, причем увеличивается также величина ∆Rf, т.е. улучшаются как эффективность, так и селективность разделения. Наилучшее разделение лизина и аргинина происходит при концентрации ДДС в ПФ в интервале 0.02-0.04 М. Следует отметить, что меньшая подвижность более гидрофобного лизина соответствует общей тенденции мицеллярной ТСХ и объясняется гидрофобизацией силикагеля при адсорбции ДДС на поверхности сорбента [16].

Однако рост подвижности аминокислоты с увеличением концентрации мицелл ПАВ в ПФ не является общей тенденцией. В ряде случаев, когда величина Rf близка к единице, она при любых концентрациях ПАВ изменяется незначительно. Например, Rf глутаминовой кислоты при изменении концентрации ДДС от 0.01 до 0.05 М изменяется в интервале от 0.85 до 0.87.

Ворожейкин и др. / Сорбционные и хроматографические процессы. 2011. Т. 11. Вып. 6

843

Таблица 1. Подвижность (Rf), параметры эффективности (N и H) и селективности (α)

концентрация, 10-2 М Рис. 1. Влияние концентрации ДДС в подвижной фазе на подвижность

аминокислот: 1-лизин, 2-аргинин

Влияние ионной силы раствора. Влияние ионной силы раствора оценивали для мицелл всех типов ПАВ. Увеличение концентрации электролита в растворе «высаливает» аминокислоты из водной среды в менее полярное мицеллярное окружение, т.е. увеличивает их солюбилизацию мицеллами ПАВ. Следствием этого должно быть уменьшение сорбции на неподвижной фазе и увеличение подвижности аминокислот в МПФ, что и наблюдалось в эксперименте (рис.2). Из рис.2 также видно, что увеличение ионной силы раствора вызывает более заметные изменения в величине Rf аминокислот в мицеллах катионного и неионного ПАВ, чем в мицеллах анионного додецилсульфата натрия, что должно быть следствием их более эффективной солюбилизации в мицеллах первых двух типов ПАВ. Вероятно, это также причина более яркой окраски пятен в присутствии солей при действии

Ворожейкин и др. / Сорбционные и хроматографические процессы. 2011. Т. 11. Вып. 6

844

нингидрина в присутствии мицелл ЦПХ и Тритона Х-100. Увеличение концентрации ПАВ в ПФ при одинаковой ионной силе также приводит к росту Rf аминокислот.

а

б в Рис. 2. Влияние ионной силы на подвижность аминокислот в ПФ на основе

мицелл ДДС (а); ЦПХ (б); Тритон Х-100 (в). СПАВ = 3 10-2 М. 1-лизин, 2-аргинин

Влияние кислотности среды. Влияние кислотности мицеллярной ПФ на подвижность аминокислот показано на рис.3.

а

б в Рис. 3. Влияние кислотности на подвижность аминокислот в подвижных

фазах на основе мицелл ДДС (а); ЦПХ (б); Тритон Х-100 (в). СПАВ = 3 10-2 М. 1- лизин, 2-аргинин

Видно, что зависимость величины Rf аминокислот в ПФ на основе мицелл катионного и неионного ПАВ проходит через максимум, а в ПФ на основе

Ворожейкин и др. / Сорбционные и хроматографические процессы. 2011. Т. 11. Вып. 6