Занятие №25
Тема. Микробиологическая характеристика дифтерии, туберкулеза, проказы.
Цель занятия. Изучить характеристику возбудителей дифтерии, туберкулеза, про-
казы, микробиологическую диагностику вызываемых ими заболева-
ний. Изучить схему бактериологического метода исследования при подозрении на дифтерию. Изучить препараты для специфической профилактики дифтерии и туберкулеза и специфического лечения дифтерии.
I.Теоретические знания:
1.Характеристика возбудителя дифтерии, микробиологическая диагностика, спе-
цифическая профилактика и лечение.
2.Характеристика возбудителей туберкулеза, микробиологическая диагностика и специфическая профилактика.
3.Характеристика возбудителя проказы, микробиологическая диагностика проказы.
II.Практические навыки:
1.Изучение схемы бактериологического исследования мазков со слизистой оболоч-
ки ротоглотки и носа больного при подозрении на дифтерию. Учет и интерпрета-
ция результатов исследования.
2.Световая микроскопия нативного препарата из мокроты больного туберкулезом,
окрашенного по Цилю-Нильсену.
1
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ К ЗАНЯТИЮ
1.Характеристика возбудителя дифтерии, микробиологическая диагностика, специфическая профилактика и лечение.
Возбудитель дифтерии – Corynebacterium diphtheriаe.
Морфо-тинкториальные свойства: грамположительные полиморфные палочки, спор, жгутиков не имеют, образуют микрокапсулу. В мазках располагаются в виде «растопыренных пальцев» или латинских букв V, X, Y. Имеют включения, представленные двумя полярно расположенными зернами волютина (полирибитилметафосфаты), которые выявляют окраской по Нейссеру.
Чистая культура C.diphtheriаe. |
Чистая культура C.diphtheriаe. |
Окраска по Граму. |
Окраска по Нейссеру. |
Культуральные свойства: требовательны к питательным средам, растут на 5% кровяном и 10% сывороточном агаре. Образуют R-формы колоний: шероховатые, исчерченные, крошковидные, иногда с зонами гемолиза. На кровяно-
теллуритовом агаре образуют 3 типа колоний: gravis (крупные, сухие, черные,
шероховатые с радиальной исчерченностью и неровными краями), mitis (мелкие, гладкие, блестящие, черные, с ровными краями), intermedius (мелкие, сухие, черные колонии с более прозрачной периферией и неровными краями).
gravis |
mitis |
intermedius |
Рост C.diphtheriаe на кровяно-теллуритовом агаре.
2
Биохимические свойства: дифференциация C.diphtheriae от других видов коринебактерий основана на способности ферментировать глюкозу, сахарозу и наличии ферментов уреазы и цистиназы (табл. 1).
|
|
|
|
Таблица 1 |
||
Дифференциация коринебактерий по биохимическим свойствам |
||||||
Признаки |
Ферментация |
|
|
|
||
|
|
|
Уреаза |
Цистиназа |
|
|
Вид коринебактерий |
глюкоза |
сахароза |
||||
|
|
|
||||
|
|
|
|
|
||
C.diphtheriae |
+ |
- |
- |
+ |
|
|
C.ulcerans |
+ |
- |
+ |
- |
|
|
C.pseudodiphtheriticum |
- |
- |
+ |
- |
|
|
C.xerosis |
+ |
+ |
+ |
- |
|
|
Факторы патогенности:
1.Факторы адгезии: микрокапсула и другие липидно-белковые вещества (обеспечивают прикрепление к клеткам эпителия верхних дыхательных путей);
2.Ферменты патогенности: гиалуронидаза, нейраминидаза;
3.Токсинопродукция: гистотоксин, гемолизин, дермонекротоксин (вызывает некроз клеток в месте размножения возбудителя).
Основной фактор патогенности – гистотоксин (экзотоксин). Нетоксигенные штаммы C.diphtheriae не вызывают развития заболевания.
Гистотоксин состоит из двух белковых фрагментов:
Фрагмент А представляет собой фермент, блокирующий фактор элонгации трансферазу-2, ответственную за удлинение полипептидной цепи на рибосоме, что приводит к подавлению синтеза клеточного белка и гибели клеток.
Фрагмент В взаимодействует с клеточными рецепторами, облегчая проникновение в клетку фрагмента А.
Токсинопродукция возбудителя дифтерии обусловлена одним из видов генетической изменчивости – лизогенной (фаговой) конверсией. Умеренный коринефаг содержит в своем геноме ген tox, кодирующий синтез гистотоксина. При интеграции ДНК умеренного фага с хромосомой дифтерийной палочки она становится токсигенной, что проявляется выработкой гистотоксина.
Источники инфекции: больной человек или бактерионоситель.
Пути заражения: воздушно-капельный, реже контактный, алиментарный. Входные ворота инфекции: слизистые оболочки ротоглотки, носа, гортани,
глаз, половых органов, поврежденные кожные покровы и др.
Дифтерия, как инфекционный процесс, развивается по интоксикационному
механизму.
Патогенез: в месте внедрения возбудителя происходит его размножение и выделение гистотоксина, который обладает как местным, так и общим действием. На слизистых оболочках формируются пленчатые фибринозные налеты, прочно спаян-
3
ные с подлежащей тканью. Повышается сосудистая проницаемость и возникает отек ткани ротоглотки и подкожной клетчатки шеи. Экзотоксин поступает в кровь и связывается с мембранами клеток органов-мишеней (миокардиоциты, почечный эпителий, клетки коркового и мозгового вещества надпочечников, периферические нервы). Ингибирование токсином белкового синтеза в клетках миокарда приводит к структурным и функциональным нарушениям тканей, способным вызвать смерть больного. В нервной ткани происходит демиелинизация волокон, приводящая к развитию параличей и парезов. В почечной ткани развивается токсический нефроз.
Клинические формы дифтерии различают по локализации, характеру течения и степени тяжести.
По локализации выделяют следующие клинические формы:
1. Дифтерия ротоглотки (90-95%).
Пленчатые фибринозные налеты при дифтерии ротоглотки.
2.Дифтерия гортани.
3.Дифтерия редких локализаций (носа, глаз, кожи, уха, половых органов и др.).
При поражении нескольких органов выделяют комбинированную форму заболевания.
Микробиологическая диагностика.
Материал на исследование: слизь или отделяемое пораженного органа (ротоглотка, нос и др.) забирают стерильным тампоном не позднее 12 часов с момента обращения больного, до назначения антибиотиков.
1.Бактериологический метод: посев исследуемого материала на 5% кровяной агар, выделение чистой культуры на 10% сывороточном агаре. Идентификацию возбудителя проводят по морфо-тинкториальным, культуральным, биохимическим свойствам и по определению продукции экзотоксина (гистотоксина).
2.ПЦР: определяют ДНК C.diphtheriae и наличие гена tox+.
Для определения гена tox+помимо ПЦР используют ИФА, РНГА и реакцию преципитации в геле (см. учебно-методическое пособие «Учение об инфекции и иммунитете. Основы иммунологии»).
4
Специфическая профилактика дифтерии:
АКДС-вакцина (адсорбированная коклюшно-дифтерийно-столбнячная вакцина). АДС-анатоксин (адсорбированный дифтерийно-столбнячный анатоксин). АДС-м-анатоксин (дифтерийно-столбнячный анатоксин с пониженным содержани-
ем антигенов).
АД-м-анатоксин (очищенный адсорбированный дифтерийный анатоксин с пониженным содержанием антигена).
Препараты с пониженным содержанием антигенов предназначены для профилактики у детей старше 6 лет, подростков и взрослых.
В настоящее время для профилактики дифтерии также используются зарубеж-
ные препараты.
Для выявления уровня коллективного противодифтерийного иммунитета определяют его напряженность серологическим методом в РНГА, ИФА.
Специфическое лечение дифтерии: сыворотка противодифтерийная антитоксическая лошадиная очищенная. Сыворотку вводят дробно (см. учебно-
методическое пособие «Учение об инфекции и иммунитете. Основы иммунологии»).
2.Характеристика возбудителей туберкулеза, микробиологическая диагностика и специфическая профилактика.
Микобактерии широко распространены в окружающей среде и могут вызывать различные заболевания: туберкулез, туберкулезоподобные заболевания, другие микобактериозы, проказу.
Вызывающие туберкулез виды микобактерий объединены в комплекс Mycobacterium tuberculosis, включающий: M.tuberculosis (92%), M.bovis (5%) (возбу-
дитель туберкулеза крупного рогатого скота), M.africanum (3%).
Морфо-тинкториальные свойства: тонкие, прямые или слегка изогнутые палочки. Реже встречаются зернистые и нитевидные формы. Спор, капсулу, жгутиков не имеют. Кислотоустойчивы за счет наличия в клеточной стенке высокого содержания липидов и миколовых кислот. По методу Циля-Нильсена окрашиваются в красный цвет.
M.tuberculosis в мокроте. Окраска по Цилю-Нильсену.
5