10. Безбородова, Н. А. Полимеразная цепная реакция в диагностике латентных, бессимптомных и хронических форм инфекционных заболеваний крупного рогатого скота / Н. А. Безбородова, В. В. Кожуховская, М. В. Петропавловский, О. Г. Томских // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. 2019. № 4. С. 30-33. DOI 10.17238/issn2072-6023.2019.4.30. EDN XVDFQN.
11. Фролова, К. Р. Применение метода ПЦР в диагностике паразитозов / К. Р. Фролова, С. М. Пиняев // Четвериковские чтения: Сборник научных работ студентов. Нижний Новгород: Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Приволжский исследовательский медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации, 2021. С. 112-117. EDN FGRCTF.
12. Hickman, M. P. Recovery of whole mitochondrial genome from compromised samples via multiplex ПЦР and massively parallel sequencing/ M. P. Hickman, K. Grisedale, B. Bintz [et al.] //Future science OA. 2018. Т. 4. №. 9. С. FSO336.
13. Патент № 2715333 C1 Российская Федерация, МПК C12Q 1/68. Набор реагентов для выявления и идентификации ДНК возбудителей бруцеллеза методом полимеразной цепной реакции в реальном времени "ОМ-скрин-бруцеллез-РВ»: № 2018139936: заявл. 12.11.2018: опубл. 26.02.2020 / В. Д. Сойбанов, Д. Г. Сочивко, А. В. Кузнецовский [и др.]; заявитель Федеральное государственное бюджетное учреждение "48 Центральный научно-исследовательский институт" Министерства обороны Российской Федерации. EDN GMVGKL.
14. Bustin, S. A. The MIQE Guidelines: Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time ПЦР Experiments/ S. A. Bustin, V. Benes, J. Garson [et al.] //Clinical Chemistry. 2009. Т. 55. №. 4. С. 611-622.
15. Quan, P. L. dПЦР: a technology review/ P. L. Quan, M. Sauzade, E. Brouzes [et al.] //Sensors. 2018. Т. 18. №. 4. С. 1271.
16. Song, F. A Simple, Cost-Effective, and Automation-Friendly Direct PCR Approach for Bacterial Community Analysis/ F. Song, J. Kuehl, A. Chandran [et al.] //Msystems. 2021. Т. 6. №. 5. С. e00224-21.
17. Amirmozafari, N. Simultaneous detection of genital mycoplasma in women with genital infections by PCR/ N. Amirmozafari, R. Mirnejad, B. Kazemi [et al.] //J Biol Sci. 2009. Т. 9. №. 8. С. 804-9.
18. Holtze, C. Biocompatible surfactants for water-in-fluorocarbon emulsions/ C. Holtze, A.C. Rowat, J. Agresti [et al.] //Lab on a Chip. 2008. Т. 8. №. 10. С. 1632-1639.
19. Diehl, F. BEAMing: single-molecule PCR on microparticles in water-in-oil emulsions/ F. Diehl, M. Li, Y. He [et al.]//Nat Methods. ? 2006. №.3. C. 551-9.
20. Li, D. Primer design for quantitative real-time PCR for the emerging Coronavirus SARS-CoV-2/ D. Li, J. Zhang, J. Li //Theranostics. 2020. Т. 10. №. 16. С. 7150.
21. Kanwar, N. Comparison of the ID Now Influenza A & B 2, Cobas Influenza A/B, and Xpert Xpress Flu point-of-care nucleic acid amplification tests for influenza A/B virus detection in children/ N. Kanwar, J. Michael, K. Doran [et al.] //Journal of Clinical Microbiology. 2020. Т. 58. №. 3. С. e01611-19.
22. Разнообразие праймеров для ПЦР и принципы их подбора / Р. Р. Гарафутдинов, А. Х. Баймиев, Г. В. Малеев [и др.] // Биомика. 2019. Т. 11. № 1. С. 23-70. EDN RTПЦРC.
23. Gou, T. Smartphone-based mobile digital PCR device for DNA quantitative analysis with high accuracy/ T. Gou, J. Hu, W. Wu [et al.] //Biosensors and Bioelectronics. 2018. Т. 120. С. 144-152.
24. Cornelis S. Silicon µPCR chip for forensic STR profiling with hybeacon probe melting curves/ S. Cornelis, O. Tytgat, M. Fauvart //Scientific reports. 2019. Т. 9. №. 1. С. 1-9.