Материал: Биоиндикация. Микробиологические методы исследования экосистем (90

Приложение 5

Определение размеров

с помощью объект­микрометра

Объект-микрометр (объек-

тивный микрометр) – это металлическая пластинка с отверстием в центре. В отверстие вставлено стекло, на которое нанесена линейка длиной 1 мм (рис. 9). Обычно она разделена на 100 частей, т. е. минимальное деление линейки объект-микрометра

лярной сетки (или диаметра поля зрения) объект-микрометр помещают на столик микроскопа и фокусируют при малом увеличении. Изображение линейки перемещают в центр поля зрения и только после этого меняют объектив на тот, при котором проводили подсчет клеток. Перемещая столик микроскопа и поворачивая окуляр, добиваются такого положения, чтобы граница квадрата сетки и шкала линейки объект-микрометра были параллельны и одна перекрывала другую. Устанавливают, скольким делениям объект-микрометра соответствует сторона квадрата окулярной сетки (диаметр поля зрения) и умножают это число на цену деления объект-микрометра.

41

Приложение 6

Классы качества воды

по микробиологическим показателям

42

Приложение 7

Классификация качества грунтов

Приложение 8

Состав питательных сред,

используемых на занятиях

Для работы с микроорганизмами можно использовать готовые питательные среды отечественного или импортного производства, а можно приготовить их самостоятельно.

Мясо-пептонный или питательный агар (МПА) для куль-

тивирования микроорганизмов, растущих на богатых питательных средах (г): пептон – 5,0; NaCl – 5,0; мясной экстракт – 1,5; дрожжевой экстракт – 1,5; агар – 15,0; дистиллированная вода – 1000 мл; pH 7,4 ±0,2. Среду стерилизуют 20 мин при 1 атм.

Среда Эшби для культивирования аэробных азотфиксаторов

(г): сахароза – 20,0; K2HPO4 – 0,2; MgSO4·7H2O – 0,2; NaCl – 0,2; FeSO4 – 0,1; CaCO3 – 5,0; агар – 15,0; дистиллированная вода –

1000 мл; pH 7,2 ±0,1. Среду стерилизуют 20 мин при 1 атм. Среда КОДА для обнаружения E. coli (г): питательный буль-

он сухой – 8,0; пептон сухой ферментативный – 8,0; натрия додецилсульфат – 0,6; натрия хлорид – 5,0; лактоза – 10,0; бромтимоловый синий – 0,05; натрия карбонат безводный – 0,3; дистиллированная вода – 1000 мл; рН 7,3 ± 0,2. Среду обычно готовят из

43

препарата промышленного производства, который представляет собой мелкодисперсный порошок желтоватого цвета, гигроскопичный, светочувствительный.

Приготовление. Навеску препарата, указанную на этикетке, размешивают в 1л дистиллированной воды, кипятят 1–2 мин, фильтруют, повторно доводят до кипения и разливают в стерильные пробирки по 5 мл. Готовая среда должна быть прозрачной, зеленого цвета. Готовую среду можно использовать в течение 7 суток при условии хранения ее при температуре 5 °С.

Желточно-солевой агар (ЖСА) для обнаружения S. aureus.

Может быть приготовлен на основе сухого питательного агара (МПА) или мясо-пептонного бульона (МПБ). В случае использования МПА к последнему добавляют 6,5% хлористого натрия. При использовании МПБ к последнему добавляют 2% агар-агара и 6,5% хлористого натрия. Полученный солевой агар стерилизуют 30 мин при 1 атм. Готовят рабочий раствор желтка: на дно стерильной чашки помещают яйцо, которое тщательно протирают ватой, смоченной спиртом. Пинцетом пробивают с двух противоположных сторон яйца 2 отверстия. Через одно из этих отверстий из яйца полностью удаляют белок, а затем, несколько увеличив отверстие, выливают желток в стерильную банку с 5– 6 бусинами. К желтку постепенно добавляют частями (по 20– 30 мл) 180–200 мл стерильного изотонического раствора NaCl. Затем содержимое тщательно встряхивают. На 100 мл расплавленного и остуженного до 45°С солевого агара добавляют 20 мл рабочего раствора желтка. После полного размешивания агар разливают в чашки Петри по 15–20 мл. Чашки можно хранить в холодильнике до 1,5–2 недель.

44

Список литературы

1.ГОСТ 17.1.3.07-82. Правила контроля качества воды водоемов и водотоков. Стандарт. М.: Государственный комитет СССР

по стандартам, 1983. 81 с.

2.СанПиН 2.1.5.980-00. Санитарные правила и нормы. Гигиенические требования к охране поверхностных вод. М.: Минздрав России, 2000. 24 с.

3.МУК 4.2.1884–04. Санитарно-микробиологический и сани- тарно-паразитологический анализ воды поверхностных водных объектов: методические указания. М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2005. 75 с.

4.МУ 2657-82. Методические указания по санитарнобактериологическому контролю на предприятиях общественного питания и торговли пищевыми продуктами № 2657 от 31.12.82.

М., 1984. 25 с.

5. Вербина Н. М. Исследование микрофлоры озер СССР

// Экологические аспекты водной микробиологии: сборник статей. Новосибирск, 1984. С. 45–49.

5. Гавришова Н. А. Распространение гетеротрофных и олигокарбофильных бактерий в водоемах и водотоках Украины // Структура и функционирование сообществ водных микроорганизмов. Новосибирск: Наука, 1986. С. 211–213.

6.Горленко В. М., Дубинина Г. А., Кузнецов С. И. Экология водных микроорганизмов. М.: Наука, 1977. 288 с.

7.Дворецкий М. Л. Пособие по вариационной статистике. М.: Лесная промышленность, 1971. 104 с.

8.Использование структурных показателей бактерио- и зообентоса для оценки качества донных отложений (на примере во-

доемов верхневолжского бассейна) / Г. А. Виноградов, Н. А. Березина, Н. А. Лаптева, Г. П. Жариков // Водные ресурсы. 2002. Т. 29, № 3. С. 329–336.

9. Кабиров Р. Р., Хазипова Р. Х. Альгологический метод оценки токсичности ПАВ // Биоиндикация и биомониторинг. М.:

Наука, 1991. С. 282–285.

10. Комплексная экологическая классификация качества поверхностных вод суши / О. П. Оксиюк, В. Н. Жукинский,

45