Материал: Биоиндикация. Микробиологические методы исследования экосистем (90

Внимание! Если размещение файла нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам

2 (n n)2 , x 1

где n − число колоний, выросших на первой, второй и т. д. чашках, засеянных из одного разведения; n − среднее их значение; x − число чашек Петри одного разведения, используемых в опыте.

Аналогично проводят подсчет численности олиготрофов

NРПА 1:10.

Для подсчета числа олиготрофов в 1 мл воды используют значения n , полученные при посеве на среду РПА 1:10, результат также выражают в колониеобразующих единицах (КОЕ/мл).

1.1.5. Морфологическое описание колоний

На поверхности питательной среды микроорганизмы могут расти в виде колоний, штриха или сплошного газона. Колонией называют изолированное скопление клеток одного вида, выросшее, в большинстве случаев, из одной клетки.

Колонии, выросшие на поверхности питательной среды, отличаются большим разнообразием. Словесное их описание проводят по следующей схеме:

1) форма – округлая, неправильная, ризоидная и т. д. (рис. 2); 2) диаметр – в мм. Если размеры колонии не превышают

1 мм, то их называют точечными;

3)поверхность – гладкая, шероховатая, бороздчатая, складчатая, морщинистая с концентрическими кругами;

4)профиль – плоский, выпуклый, кратерообразный, конусовидный и т. д. (рис. 3);

5)блеск и прозрачность – блестящая, матовая, тусклая, мучнистая, прозрачная;

6)цвет – бесцветная (грязно-белые колонии относят к бесцветным) или пигментированная – белая, желтая, золотистая, оранжевая, сиреневая, красная, черная. Особо отмечают выделение пигмента в субстрат;

7)край колонии – ровный (гладкий), волнистый, зубчатый, бахромчатый (лопастной, неправильный, реснитчатый, ворсинчатый), ветвистый и т. д. (рис. 4);

8)консистенция – плотная, мягкая, врастающая в агар, слизистая (прилипает к петле), тягучая, пленчатая (снимается цели-

11

ком), хрупкая (легко ломается при прикосновении петлей). Консистенцию колонии определяют, прикасаясь к ее поверхности петлей.

Рис. 2. Форма колоний: 1 – круглая; 2 – круглая с фестончатым краем; 3 – круглая с валиком по краю; 4, 5 – ризоидные; 6 – с ризоидным краем; 7 – амебовидная; 8 – нитевидная; 9 – складчатая; 10 – неправильная; 11 – концентрическая; 12 – сложная

12

Рис. 3. Профиль колонии: 1 – изогнутый; 2 – кратерообразный; 3 – бугристый; 4 – врастающий в субстрат; 5 – плоский; 6 – выпуклый;

7 – каплевидный; 8 – конусовидный

Рис. 4. Край колонии: 1 – гладкий; 2 – волнистый; 3 – зубчатый; 4 – лопастной; 5 – неправильный; 6 – реснитчатый; 7 – нитчатый;

8– ворсинчатый; 9 – ветвистый

1.1.6.Анализ основных морфологических групп копиотрофов

Для анализа морфологических групп копиотрофных бактерий лучше всего использовать чашки с оптимальным числом колоний. Сначала на основании внешних различий выделяют основные морфологические типы колоний (см. п. 1.1.5), а затем проводят их микроскопирование. При микроскопировании определяют основные диагностические отличия микробных клеток: морфологию (кокки, палочки, вибрионы и т. п.), отношение к окраске по Граму (прил. 3), подвижность (прил. 4), наличие спор.

Результаты анализа основных морфотипов заносят в таблицу

(табл. 2).

Обобщая полученные данные, подразделяют все морфологические типы на 4 основные группы и определяют долю каждого морфотипа: 1) кокки; 2) грамотрицательные неспорообразующие

13

палочки; 3) грамположительные неспорообразующие палочки; 4) грамположительные спорообразующие палочки.

 

 

 

 

 

 

 

Таблица 2

 

Основные морфотипы копиотрофов

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Внешний

Морфоло-

Микро-

 

Свойства

Чис-

Доля

п/п

вид коло-

гическое

скопиче-

бактериальных

ло

морфо-

 

нии

описание

ская

 

клеток

коло-

типа,

 

 

колонии

картина

 

 

ний

%

 

рисунок

по схеме

рисунок

1)

морфология

 

m1×100/М

1

колонии

п. 1.1.5

поля

2)

окраска по

m1

 

сверху и в

 

зрения

Граму

 

 

 

профиль

 

микро-

3)

наличие спор

 

 

 

 

 

скопа

4)

подвижность

 

 

 

 

 

 

 

 

i

 

 

 

 

 

mi

 

 

 

Итого

 

 

M

100

При интерпретации результатов можно ориентироваться на следующие показатели:

-в относительно чистых водах преобладают кокки (до 80% от общего количества гетеротрофных бактерий);

-при загрязнении возрастает доля спорообразующих и других палочковидных форм (до 80%), появляются в значительном количестве вибрионы (10% и более), удельный вес кокков резко падает (10% и менее);

-преобладание неспорообразующих палочковидных форм

над спорообразующими говорит об усиленных процессах эвтрофикации5 [5].

1.1.7. Определение индекса трофности

Как уже было сказано, автохтонные микроорганизмы природных вод адаптированы к невысокому содержанию органического вещества и выделяются из воды преимущественно на средах с низкой его концентрацией. Поэтому изменение величины соотношения численности бактерий, растущих на обедненных

5 Эвтрофикация (евтрофикация) – повышение интенсивности продуцирования органического вещества вследствие увеличения содержания в водоемах азота, фосфора и других биогенных элементов.

14

средах и стандартном МПА или РПА, может служить индикатором изменения трофического состояния водоема. Величину этого соотношения используют в качестве индекса трофности (ИТ):

ИТ = NРПА:10 / NРПА ,

где NРПА – численность копиотрофных бактерий, выросших на РПА; NРПА:10 – численностьолиготрофныхбактерий, выросшихнаРПА:10.

Используя полученные значения по численности копиотрофных и олиготрофных бактерий, рассчитывают ИТ для исследуемого участка водоема.

При оценке состояния водоема принимают во внимание, что в относительно бедных органическим веществом водах (мезотрофные и олиготрофные) наиболее благоприятные условия складываются для олиготрофных бактерий, поэтому ИТ может достигать значений от 10 до нескольких сотен. В загрязненных и высокотрофных водах преобладают бактерии, использующие высокие концентрации органического вещества, в связи с чем ИТ в таких водоемах составляет 2–3 и даже может снижаться до 1 [6].

1.1.8. Обобщение полученных результатов

Результаты, полученные всеми рабочими звеньями, заносят в итоговую таблицу (табл. 3).

Таблица 3

Итоговая таблица по обследованному объекту

№ точки, описание

Число копиотрофов, КОЕ/мл

Число олиготрофов, КОЕ/мл

Т

Преобладающий морфотип, %

Класс (разряд качества) воды

Зона сапробности

Категория трофности

И

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Пользуясь справочным материалом (прил. 6), определяют класс качества воды, категорию трофности и зону сапробности6

6 Сапробность (от греч. sapros – гнилой) – степень загрязнения водоема. Трофность – характеристика водоёма по его биологической продуктивности, обусловленной содержанием биогенных элементов.

15

Источник: https://studfile.net/preview/16724848/