обследованного участка водоема. Полученные данные сопоставляют с результатами анализа основных морфологических групп сапротрофов, а также со значением индекса трофности и делают общий вывод о качестве воды обследованного участка.
На основании комплекса исследований, проведенных всеми рабочими звеньями, делают обобщенный вывод о состоянии водоема и протекании процессов самоочищения.
1.2. Лабораторнаяработа2
Оценка качества донных отложений водоема по показателям бактериобентоса
Донные отложения (ДО) играют важную роль в круговороте вещества и энергии в водных экосистемах. Значительная доля органического вещества, образовавшегося в водоеме, и основная часть привнесенного с водосборной площади или поступившая со стоками не успевает разложиться в водной толще и осаждается на поверхности грунтов. Здесь в результате деятельности сообщества бентосных организмов происходит его деструкция. Ведущая роль в этом процессе принадлежит сложным бактериальным комплексам, состав которых зависит от типа водоема и ряда экологических условий [7]. При наличии кислорода в ДО преобладает аэробная минерализация органического вещества с образованием нейтральных биогенных веществ и поглощением свободного О2. В бескислородных условиях происходит анаэробный распад с выделением восстановленных соединений: метана, сероводорода, аммиака и др. Изучение структуры и функционирования бактериобентоса и изменений, происходящих в нем под влиянием различного рода загрязнений, позволяет не только охарактеризовать процессы, происходящие в водоемах, но и оценить экологическое состояние водоема в целом.
К микробиологическим показателям, которые могут быть использованы для контроля качества ДО, относятся: общая численность бактериобентоса, численность аэробных сапротрофных бактерий, анаэробных бродильщиков, сульфатредукторов, соотношение аэробы/анаэробы и некоторые другие. Среди них наиболее значимыми при оценке качества ДО считаются общая численность бактериобентоса и численность аэробных сапротрофных бактерий [9]. Абсолютные показатели продукции и деструк-
16
ции ОВ не могут служить критериями загрязнения грунтов, они характеризуют состав, физиологическое состояние бактериобентоса и направленность микробиологических процессов [14].
Цель работы – оценка качества ДО водоема по некоторым показателям бактериобентоса.
Задачи:
1.Определить общую численность бактериобентоса в исследуемой пробе ДО.
2.Определить численность сапротрофов в исследуемой пробе ДО.
3.На основании проведенных исследований оценить качество ДО в исследуемой точке.
4.На основании результатов исследований, проведенных в разных точках, сделать обобщенный вывод о качестве ДО обследованного водоема.
Отбор проб ДО для выполнения работы можно провести в тех же точках водоема, где отбирались пробы воды (см. лаб. работу 1). Можно также изучать модельные водоемы. Каждое звено студентов (3–4 человека) анализирует отдельную пробу.
Для выполнения данной работы отводится два занятия. На первом занятии студенты делают все необходимые посевы и готовят препараты для подсчета общей численности бактерий (п. 1.2.1–1.2.3). На следующем – проводят подсчет общей численности бактериобентоса, численности сапротрофов и оценива-
ют качество ДО (п. 1.2.4–1.2.6).
Результаты необходимо сопоставить с результатами, полученными при исследовании проб воды.
Порядок выполнения лабораторной работы
1.2.1. Подготовка проб донных отложений для анализа
Прежде чем приступить к анализу ДО, дают краткую их характеристику: указывают глубину взятия пробы, цвет, запах, тип ДО (песок, илистый песок, песчанистый ил, ил, глинистый ил и т. п.). Данные заносят в таблицу (табл. 5).
После этого приступают к подготовке пробы ДО для анализа. Важным этапом при подготовке к анализу образцов ДО является десорбция клеток бактериобентоса и их отделение от минераль-
17
ных частиц. Для этих целей используют микроизмельчитель тканей РТ-2 (гомогенизатор). Перед началом работы проводят стерилизацию тех частей прибора, которые будут соприкасаться с пробой ДО. Для этого на пинцет наматывают небольшой кусок ваты, полученный ватный тампон смачивают спиртом и протирают им роторный нож и металлический стакан прибора. Затем эти части гомогенизатора стерилизуют фламбированием7 с помощью подожженного ватного тампона. Металлический стакан прибора при этом следует держать дном вверх, чтобы по мере исчерпания кислорода горение само прекратилось.
Стерильной пипеткой на 10 мл (с отбитым носом) отбирают некоторое количество ДО. Если необходимо отделить ДО от избытка воды, то их фильтруют через стерильный складчатый бумажный фильтр. Далее взвешивают 10 г ДО на технических весах, с использованием стерильного часового стекла. Взвешенный образец ДО заливают 100 мл стерильной водопроводной воды и обрабатывают на РТ-2 в течение 5 мин при 5000 об/мин. Обработанный образец фильтруют через стерильный складчатый бумажный фильтр, вставленный в стеклянную воронку и смоченный дистиллированной водой. Фильтрат собирают в стерильную пустую колбу. Фильтрование проводят для окончательного отделения клеток от минеральных частиц. Подготовленная таким образом проба ДО представляет собой разведенный в 10 раз (1:10) исходный образец ДО. Ее используют для дальнейшего микробиологического анализа.
При отсутствии прибора можно применять растирание образца ДО в стерильной ступке в течение 5 мин пальцем в резиновой перчатке, соблюдая все правила работы в стерильных условиях.
1.2.2. Приготовление препаратов для определения общей численности бактерий методом прямого счета (метод Виноградского – Брида)
Метод сводится к тому, что в определенном объеме исследуемого образца непосредственно под микроскопом подсчиты-
7 Фламбирование (франц. flamber – опаливать, прокаливать) – обработка поверхности пламенем; применяется для стерилизации различных предметов.
18
вают количество клеток микроорганизмов [16]. Для этого готовят фиксированные препараты.
Приготовление препарата. Хорошо обезжиривают предметное стекло и парафиновым карандашом по стеклу рисуют на нем квадрат размером 20×20 мм. Затем стерильной пипеткой на 0,1 мл наносят внутрь квадрата точно измеренный объем подготовленной пробы ДО (обычно от 0,02 до 0,05 мл) и каплю 0,03 – 0,1% водного раствора агара. Микробиологической петлей распределяют каплю по всей площади квадрата. Мазок высушивают на воздухе. После высыхания препарат фиксируют 20–30 мин в 96%-м спирте или в пламени спиртовки и окрашивают фуксином в течение 1–3 мин (прил. 2). Окрашенные препараты сохраняют до следующего занятия.
Поскольку в процессе приготовления препарата могут произойти ошибки различного характера (слишком мало или много клеток на препарате, плохая фиксация, слабая окраска и др.), рекомендуется приготовить сразу несколько препаратов (минимум два), используя разные объемы пробы.
1.2.3.Посев на среду РПА для количественного учета аэробных сапротрофных бактерий
Перед посевом из подготовленной пробы ДО готовят серию десятикратных разведений до получения конечного разведения 1:104 (четвертое) или 1:105 (пятое). Разведения готовят по методике, описанной в п. 1.1.1.
Производят посев из каждого разведения глубинным способом на среду РПА в двух повторностях (см. п. 1.1.2). Чашки с посевами инкубируют в термостате 5 – 7 суток при 280 С.
1.2.4.Подсчет колоний на чашках Петри
иопределение численности сапротрофных бактерий
Подсчет колоний на чашках Петри и определение численно-
сти сапротрофных бактерий (Nc , КОЕ/г ДО ) проводят точно так же, как и при анализе проб воды (см. п. 1.1.3 и 1.1.4).
1.2.5. Определение общей численности бактериобентоса
Для определения общей численности бактериобентоса используют окрашенные препараты, подготовленные на предыдущем занятии (см. п. 1.2.2).
19
Подсчет количества клеток проводят при максимальном увеличении микроскопа, используя масляную иммерсию. Для облегчения процесса подсчета в окуляр микроскопа вставляют окулярную сетку и проводят подсчет клеток в квадратах окулярной сетки. При отсутствии сетки проводят подсчет клеток непосредственно в полях зрения микроскопа. Просчитывают 50 – 100 квадратов сетки (не менее 10 полей зрения). В процессе подсчета клеток препарат передвигают по диагонали. Если подсчет ведут в квадратах сетки, то учитывают также клетки, пересекающие верхнюю и правую стороны квадрата. Для получения достоверного результата общее число подсчитанных клеток должно быть не менее 600. Результаты подсчета заносят в табл. 4.
Пересчет среднего количества клеток в квадрате сетки (поле зрения) на содержание бактерий в 1 г ДО (Nб.общ.) проводят по формуле:
Nб.общ. |
(n m) S r |
[кл/ г ДО], |
|
s V |
|
где S – площадь окрашенного на стекле препарата, мкм2 (4·108); r – разведение, из которого был сделан препарат (10); s – площадь квадрата окулярной сетки (поля зрения), мкм2; V – объем пробы, затраченный на приготовление окрашенного препарата, мл; m – стандартная ошибка.
Таблица 4
Результаты прямого счета клеток бактерий
№ квадрата сетки (поля зрения) |
Количество микробных клеток (ni) |
||
1 |
|
|
n1 |
2 |
|
|
n2 |
… |
… |
||
i |
ni |
||
Итого: |
ni |
||
Среднее количество клеток ( |
|
) |
ni / i |
n |
|||
Площадь квадрата окулярной сетки или поля зрения определяют с помощью объект-микрометра. Его помещают вместо препарата на предметный столик и при том же увеличении, при котором проводили подсчет клеток, определяют размер стороны
20