Материал: микра итог 2 (13)

Внимание! Если размещение файла нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам

26. Дробные методы стерилизации.

Тиндализация, или дробная стерилизация, была предложена в 1877 г. Дж. Тиндалем. Она применяется для сред, портящихся при д-вии т выше 100 °С. Тиндализацию осущ текучим паром в автоклаве с незавинченной крышкой или в кипятильнике Коха. Среды прогревают несколько раз по 10-15 мин. Между прогреванием среды ставят в термостат при т 30°С на 8-12 ч для прорастания жизнеспособных спор. Среды, не выдерживающие нагревания при 100°С, прогревают более осторожно: при 60-80°С через каждые 8-12 ч 4-5 сут подряд. При 1ом нагревании погибают вегетат формы микроорг, при послед — вновь появившиеся вегетат формы. Вследствие длит этот способ в аптеках применяется редко. Тиндализация - метод дробной стерилизации при т ниже 100С. Она испол для стерилизации объектов, кот не выдерживают 100С: сыворотка, асцитич жидкость, вит. проводится в водяной бане при 56С по 1 ч 5-6 д.

27. Методы частичного обеспложивания.

кипячение - погибают только вегетат формы бак, споры могут выживать; метод применяется для обработки игл, инструментов многораз испол (кипячение в теч 30 мин с добавлением в воду 1% бикарбоната натрия), для обработки некот инъекцион р-ров (не переносящих автоклавирования), кот до стерилизации должны отвечать очень высокому стандарту чистоты. Для стерилизации пит сред этот метод не применяется. Этим способом стерилизуют резиновые предметы, хирургич инструментарий, стеклян посу­ду. Примен кипячение для стерилизации инъекцион р-ров не рекомендуется, т к по эффективности оно значительно уступает стерилизации паром. Фильтрование - освобождение жидкостей от микробов в тех случаях, когда материал не м б подвергнут нагреванию (сыворотка, ряд лек р-ров). Фильтры имеют настолько малые поры, что задерживают микробы, но вирусы проникают через них. Поэтому фильтрат от вирусов не освобождается. производится или под повыш давлением, и жидкость нагнетается через поры, или создается разрежение, и жидкость всасывается через фильтр в приёмник. Стерильность профильтрованной жидкости проверяется путем посева её на пит среду. Фильтры и приёмники д б стерильными. Пастеризация - способ основан на том, что при нагревании до 50-60°С в теч 30 мин, или 70-80°С – в теч 5-10 мин, или 90°С - 2 мин погибает бол-во бесспоровых микробов. Споры остаются жизнеспособ. Метод примен для пастеризации молока, вина, компотов. Пастеризован продукты нужно хранить на холоде, чтобы не проросли споры. Пастеризация - частичн стерилиз, кот проводится при относит низкой т однократно.

28. Методы контроля стерилизации.

Для контроля стерилизации испол: 1. Физ методы – максимальные и контактные термометры. 2. Химич в-ва как темпер индикаторы. Это порошкообразные в-ва со строго опред т плавления: бензонафтол (110°С), антипирин (113°С), резорцин и сера(119°С), бензойная к-та (120°С). Эти в-ва смешивают с небольшим кол-вом сухой анилиновой краски (фуксин, метиленовый синий) и помещают в запаянные стеклянные трубочки, кот укладывают между стерилизуемыми предметами. Этот метод испол для контроля режима стерилизации в автоклаве. Если т в автоклаве была достаточной, в-во в трубочке плавится и окрашивается в цвет красителя, кот растворяется в этом в-ве. 3. Биологич методы–испол термостойкой спорообразующей тест культуры – Bacillus stearothermophilus. Его споры погибают при 121°С за 15 мин при их содержании в 1 мл среды 106 кл. Биологич тест испол для контроля режима стерилизации в печи Пастера. Пробирки с полосками марли, фильтр бумаги, с шелковой нитью, зараженные спорами, помещают в шкаф между стерилиз предметами. После стерилизации в пробирку вносят питат бульон и наблюдают за ростом микроорг.

29. Дезинфицирующие вещества, механизм их действия. Консерванты.

Дезинфекция – уничтожение патогенных микроорг в объектах окр среды для прерывания путей передачи инф с помощью химич в-в. Химич в-ва, кот испол для дезинфекции, называются дез в-вами. Они нарушают физико-химич структуру микробной кл. По механизму д-вия дез в-ва делят на след гр: 1.Окислители – повреждают сульфгидрильные гр белков. К ним относятся галогены (хлор, бром, йод) и их соед, перекись водорода, перманганат калия. 2. Поверхностно-активные в-ва – повреждают клет стенку. К ним относятся бактерицидные мыла, сульфонол, амфолан, твины. 3. Соли тяжелых метал – вызывают коагуляцию белков, образование нерастворимых альбуминатов. К ним относят соли ртути, серебра, меди, свинца. Их применение ограничено при наличии дополнит белков, кот затрудняют доступ к возбуд. 4. Фенол, крезол и их производные – повреждают клет стенку, растворяют липиды цитоплазматич мембраны, нарушая ее полупроницаемость, а затем повреждают белки, вызывая гибель микробов. 5. Щелочи, известь – приводят к набуханию и растворению белков. Их применение ограничено из-за повреждающего д-вия на различные предметы (посуду). 6. Красители – обладают сродством к фосфорнокислым гр, повреждают нуклеопротеиды и вызывают гибель микроорг. К ним относятся бриллиантовый зеленый, метиленовый синий, риванол, трипофлавин. К наиб распростр дез в-вам относят хлорная известь (0,1–10% р-р), хлорамин (0,5–5% р-р), фенол (3-5% р-р). лизол (3-5% р-р). двутретьосновная соль гипохлората кальция (ДТСГК (0,1-10% р-р). 0,1 – 0,2% р-р сулемы. соед ртути, 70° этил спирт. В микробиологич практике дез в-ва испол для обработки посуды (пипетки, предмет стекла), рабоч места, рук. Выбор дез в-ва, длит его воздействия опред особен микроорг и той средой, в кот он находится (н, мокрота). Химич в-ва также испол для консервации лс. К консервации прибегают в тех случаях, когда невозможна стерилизация лек-в или невозможно изготовление их в упаковке одноразового испол. Для консервации применяют неорганич соед (соли тяжелых металлов, серебра, ртути), металлоорганич соед (мертиолат, фенил ртутные соли), органич соед (спирты, фенолы). Консерванты должны отвечать след требованиям: 1) д б фармакологически инертными; 2) иметь широкий спектр антимикробного д-вия; 3) не взаимодействовать с лв; 4) поддерживать стерильность лекарства в течение всего времени его применения.

30. Экология микробов. Микрофлора воды, воздуха, почвы. Роль микробов в круговор в-в в природе.

Воздух: Обнаруживаются кокковид и палочков бак, бациллы, клостридии, актиномицеты, грибы и вирусы. ф-р передачи респираторн инф, возбуд передается воздушно-капел или возд-пыл путем. Солнеч лучи и др ф-ры способствуют гибели микрофлоры воздуха. может служить ф-ром передачи патоген микробов - стафилок, стрепток, палочек дифтерии, кокклюша, тубика, вирус кори и гриппа. Микрофлора меняется в зависимости от микрофлоры поверхн данного участка земли, климатич условий, вр года и др ф-ров. Чем больше в воздух попадает с поверхн земли пыли, тем больше в нем микробов. Воздух густонаселенных местностей крупных городов богат микроорг, меньше загрязнен воздух сельск местности. Кол-во микроорг в воздухе уменьш по мере удаления от населенных мест. Зимой в воздухе микробов находится гораздо меньше, чем летом. вода: Состав микрофлоры воды зависят от химич состава воды, т, содержания CO2 и O2, рН, облучения солнеч лучами, содерж питат в-в, флорой и фауной, глубиной водоёма, выпуском сточных и промыш вод. В пресных водоёмах (реки, озёра) норм обитателями явл Micrococcus roseus и др. микрококки, Pseudomonas fluorescens , извитые формы (Sp. rubrum). В водах пресных водоемов обнаруживаются различные бак: палочковидн (псевдомонады), кокковид (микрококки) и извитые. Загрязнение воды органич в-вами сопровождается увелич анаэробных и аэробных бак, а также грибов. Микрофлора воды выполняет роль активного ф-ра в процессе самоочищения ее от органич отходов, кот утилизируются микроорг. Вместе с загрязненными ливневыми, талыми и сточными водами в озера и реки попадают предст норм микрофлоры чела и животных (киш палочка, энтерококки) и возбуд киш инф, (брюш тифа, паратифов, дизентерии, холеры). явл ф-ром передачи возбуд многих инфекц заб. Вода артезианских скважин не содержит микроорг. Почва: явл основ средой обитания многих микроорг, с раст и животн биогеоценоз. принимает активное участие в процессах формирования и самоочищения, а также в круговороте в-в в природе (азота, углерода, серы, железа и др соед). Значение - микробы осущ разложение и минерализацию органич животных и растит остатков, осущ очищение от нечистот и отбросов. Микрофлора почвы по колич-ному и видовому составу значительно колеблется в зависимости от региональных и климатич условий, химич состава и физич св-в почвы, р-ции (рН), т, влажности, степени аэрации. Микроорг распростр по горизонтам почвы неодинаково. Меньше микроорг содержится в поверхностном слое почвы толщиной несколько мм, где они подвергаются неблагоприят возд-вию солнеч света и высушиванию. Чем глубже почвен горизонты, тем беднее они органич в-вами, доступ воздуха в них затруднен, поэтому здесь численность анаэробных бак увелич. Микрофлора почвы предст разнообразн видами бак, актиномицетов, грибов, водорослей и простейших животных.К постоян обитателям почвы относ различные гнилостные, преимущественно спорообразующие, аэробные и анаэробные бак; бак, разлагающие клетчатку; нитрифицирующие, денитрифицирующие, азотфиксирующие, серо- и железобак. патоген микроорг могут длит сохр в почве:1. Возбуд ботулизма, актиномицеты, грибы-возбуд микозов. 2. Спорообразующ бациллы и клостридии, кот попадают в почву с выделениями чела и могут длит здесь сохр в виде спор (возбуд сибир язвы, клостридии столбняка и газовой анаэробной инф) 3. Неспорообразующ бак, вирусы, попадающие в почву с выделениеми чела и животных и сохр в почве несколько дней и месяцев.

31. Понятие о санитарно-показат микроорг. Санитарно-показат микроорг для почвы, воды, воздуха.

Санитарно-показат микроорг (СПМ)–это предст норм микрофлоры, кот выделяются естествен путем в окр среду и там сохр, поэтому служат показателями санитарного неблагополучия, потенциальной опасности исслед объектов. Санитарно-показательные бак окр среды. 1.Вода – бак гр кишеч палочки (БГКП), энтерокок, стафилок. 2.Почва – БГКП, энтерококки, термофилы, возбуд газ гангрены. 3.Воздух – бета-гемолитич стрептококки, стафилококки. 4.Пищ продукты – БГКП, энтерококки, стафилококки, протей. 5.Предметы обихода – БГКП, фекал стрептококки, стафилок. Все патоген микроорг, находящиеся в почве, можно разделить на след гр: · микрофлора, кот становится частью природной экосис-мы (бак Clostridium botulinum, актиномицеты); · патоген микробы, попадающие в почву с трупами и выделениями животных и чела, сохр в ней длит вр (возбуд столбняка, сибир язвы, тубика, бруцеллеза, газ гангрены); · патоген микроорг, кот также попадают в почву с трупами и выделениями, но сохр в ней короткий промежуток вр (сальмонелла, кишеч палочка, холерный вибрион и др). Норм микрофлора орг чела предст собой стабильное сообщество микроорг, т.е. микробиоценоз. Резидентная (постоянная) облигатная микрофлора представлена микроорг, постоянно присутствующ в орг. Транзиторные микроорг- микроорг, кот обитают на коже или слиз оболочках в теч от нескол ч до нед. Потенциально опасные микроорг- те микроорг, кот при опред условиях, н, сниж иммун и неправил леч, приводят к возникновению различных заб.

32. Микробиолог исслед в аптечных учреждениях: объекты, отбор проб, методы исслед. Какие показатели определяются?

1. Дистил вода, испол для изготовл лс (кроме лек-в для инъекций и глаз капель). Пробы отбирают в кол-ве 300 мл в стерильные бутылки с последующ закрытием ватн пробками и бумаж колпачками. Пробы отбирают из бюретки (или трубопровода), конец кот предварительно обжигают ватой, смоченной спиртом. Опред кол-ва мезофильных аэробных и факультативно анаэробных бак. Исслед воду вносят по 1 мл в 2 стерил чашки Петри, затем заливают растопленным МПА. После застывания агара чашки выдерживают сут при 37ºС и ещё сут при комнатн т. После этого подсчитывают число выросших колоний как на поверхн, так и внутри пит среды. При вычислении результатов анализа выводят среднее арифметическое из числа колоний, выросших на обеих чашках. Для выявления плесневых и дрожжевых грибов засевают по 0,5 мл исслед воды на 2 чашки со средой Сабуро и инкубируют при 20-22ºС в теч 3-4 сут. Затем подсчитывают число колоний плесневых и дрожжевых грибов на обеих чашках. Результаты оценивают путём суммирования числа бак и грибов. Опред титра бак гр киш палочки (БГКП) проводится по методике для пить воды. Оценка результатов проводится в соответ с требованиями ГОСТ «Вода питьевая». 2. Дистил вода для приготовления инъекц р-ров и глаз капель. Инъекц р-ры до стерилизации. Глаз капли, приготовленные в асептических условиях на стерильных основах. Пробы дистил воды отбирают в стерильные флаконы в кол-ве 15-20 мл. Инъекц р-ры (до стерилизации) отбирают во вр их приготовления, но не позднее 1,5 ч, и доставляют в лаб в тех же флаконах, в кот они будут подвергнуты стерилизации. Глаз капли доставляют в аптечной упаковке. Опред кол-ва мезофильных аэробов и факультативных анаэробов .Опред наличия БГКП в 1 мл проводится след обр. Исслед материал в кол-ве 1 мл засевают в 9 мл разведённой среды Эйкмана. Посевы выращивают при 37ºС в теч сут, затем высевают на среду Эндо и после суточ инкубирования чашек при 37ºС отбирают на чашках подозрительные колонии бак и опред их принадлежность к БГКП. Колич-ное опред БГКП проводится след обр. 1 мл исслед материала наливают в стерил чашку Петри и заливают растопленной средой Эндо. После застывания среды её инкубируют при 37ºС в теч сут и учитывают кол-во типичных колоний. Предельно допустимые кол-ва микроорг в 1 мл: дистил вода, испол сразу же после перегонки, не более 15, испол после стерилизации для изготовления асептическим способом глазных капель - не более 3, р-ры для инъекций до стерилизации не позднее 1,5 ч после изготовления – не более 30. Наличие киш палочки, золотистого стафилококка, синегнойн палочки и протея в данной гр исслед материалов недопустимо. 3. Инъекц р-ры и глаз капли после стерилизации доставляются для исслед в аптечной упаковке. Материалы этой группы д б стерильными. 4. Отбор сухих лв производят по показаниям. Стерильными ложками в стерильную посуду лаб отбирают 30-50 г в-ва. Если в-во таблетированное, отбирают фламбированным пинцетом в стерильную посуду лаб в таком же кол-ве. 5. Аптечную посуду, подготовленную для разлива инъекц р-ров и глазн капель, отбирают в момент приготовления их в кол-ве 3 штук одинаковой ёмкости. Флаконы доставляют в лаб в укупоренном виде, испол при этом аптечные пробки и прокладки. Доставленные в лаб флаконы послед ополаскивают 10 мл стерильной водопроводной воды. Воду из флакона во флакон переливают над пламенем горелки, тщательно ополаскивая каждый флакон. Пробки (корковые и полиэтиленовые) и прокладки отбирают в момент приготовления инъекц р-ров и глаз капель фламбированным пинцетом и помещают по 5 штук в широкогорлые стерил колбы или банки с последующим закрытием стерил ватно-марлевыми пробками и бумаж колпачками. В лаб в колбы или банки наливают 10 мл стерильной водопроводной воды и тщательно ополаскивают. Испол в аптеках пипетки прополаскивают несколько раз в пробирке, содержащей 10 мл стерильной водопроводной воды, пробирки со смывной жидкостью доставляют в лаб. Число колоний, уст в 1 мл смывной жидкости, умножают на 10- содержанию бак на всей смывной поверхности. Кол-во бак не должно превышать 150. Опред наличия БГКП: 8 мл оставшейся смывной жидкости засевают в 1 мл концентрированной среды Эйкмана, инкубируют при 37ºС в теч сут и в дальнейшем идентифицируют БГКП. Наличие бак гр киш палочки не допускается. 6. Смывы с инвентаря, оборудования, рук персонала (во вр приготовления лф), санитарной одежды осущ с помощью ватных тампонов, помещённых в пробирки с физр-ром. Влажным тампоном протирают исслед поверхность, затем тампон помещают в среду Кесслера или Кода. После инкубации в термостате пересевают на среду Эндо и опред наличие БГКП. Опред патогенных (золотистых) стафилококков осущ путём посева смыва в пробирку с солевым МПБ. После инкубации в термостате опред наличие стафилококков. Колич-ные опред их не проводятся. Наличие БГКП и стафилококков не допускается. 7. Исслед воздуха. Отбор проб воздуха производится при соблюдении след условий: - чистое подготовленное к работе помещение; - закрытые форточки и двери; - ур высоты отбора воздуха соответст высоте раб стола. 8. Методы микробиологич контроля лс. Присутствие микробов в лс нежелательно, за искл тех, в кот наличие микробов специально имеется в виду. необходим контроль. Контроль проводится в соответст с Гос-ной фармакопеей. Лс, стерилиз в процессе производства, испытывают на стерильность, а инъекц р-ры - также и на пирогенность. Лс, не стерилизуемые в процессе производства, м б контаминированы микроорг и поэтому д б испытаны на микробную чистоту.

33.Источники и пути загрязнения микробами лек-ного растительного сырья. Правила хранения.

Ист микробного загрязнения: • воздух помещений. в 1 л воздуха в большом городе содержит от 1 тыс. до 1 млн. разных частиц, кот явл носителями микрофлоры – 1 микроорг приходится на 1000 взвешенных частиц; • исходные лек-ные и вспомогат в-ва животного, растит и синтетич происхожд • дисперсионные среды, в т ч вода очищенная, микробная контаминация кот происходит при транспортировке, хранении; • вспомогат материалы (фильтрующие – вата, бумага, марля; упаковочные – бумага, флаконы, банки, коробки, пробки); • чел. В спокойном состоянии чел в 1 мин выделяет до 200 тыс. разных частиц (чешуйки, кл эпидермиса), при движении – до 1 млн., поэтому присутствие в торговом зале аптеки значительного кол-ва посетителей, занос извне пыли, грязи приводит к увелич в воздухе микрофлоры, проникающей и в производствен помещения; • персонал аптеки. Даже в спец одежде в чистых помещениях в окр среду сотрудники выделяют до 2 млн. частиц размером от 0,5 мкм до 5 мкм, 300 тыс. частиц размером 5 мкм и более 160 частиц, на кот находятся микроорг. • Ист загрязнения в основном – рот и нос. При разговоре кол-во частиц, выделяемых челом, возрастает; • технологич процесс (оборудование, приборы, аппараты). Правила хранения лек-ного сырья.1.Лек-ное растит сырье должно храниться в сухом, хорошо вентилируемом помещении в хорошо закрытой таре, в аптеках - стеклян, металлич, в ящиках с крышкой, на складах - в тюках или закрытых ящиках на стеллажах. Резаное сырье хранят в ткан мешках, порошков - в двойных мешках: внутр - бумажный, многослойный, наруж - ткан, картонных упаковках. В зависимости от физико-химич св-в лек-ного растит сырья допускается упаковка из полимерных материалов. 2.Лек-ное растит сырье, содержащее эфирн масла, хранят изолированно в хорошо укупоренной таре. 3. Некот гигроскопич травы, листья и плоды необход хранить в стеклян или металлич таре хорошо укупоренными. 4. При хранении высушенных сочных плодов, для предотвращения порчи их амбарными вредителями, рекомендуется помещать в ящики с плодами флакон с хлороформом, в пробку кот вставлена трубочка для улетучивания паров хлороформа. Хлороформ добавляют по мере его улетучивания. 5. Готовые лек-ные растит сборы хранят в аптеках и аптечных складах с соблюдением общих правил. 6. Лек-ное растит сырье должно подвергаться периодич контролю в соотв с требованиями ГФ. Трава, корни, корневища, семена, плоды, утратившие норм окраску, запах и требуемое кол-во д-вующих в-в, а также пораженные плесенью, амбарными вредителями, в зависимости от степени поражения, либо бракуют, либо после переработки и контроля испол. 7. Особое внимание при хранении следует уделить лек-ному растит сырью, содерж сердеч гликозиды. Для них ГФ уст более строгие сроки хранения и повтор переконтроля на содержание биологич активности. 8. Ядовит и сильнод-вующее лек-ное растит сырье хранят в отдельном помещении или отдельном шкафу под замком. Микроорг явл 1им из д-вующих ф-ров внеш среды. При неблагоприят санитарно-гигиенич условиях они могут отрицат влиять на кач-во, изготовляемых лек-в в аптеках, и служить причиной возникновения внутриаптечных инф. ущерб препаратам наносят сапрофитные микроорг, разрушающие лек-ва и испол их как питат в-ва для своего роста и развития. Такие лек-ва теряют свою терапевтич активность, а иногда приобретают токсич св-ва. многие микроорг активно разлагают сульфаниламидные препараты и алкалоиды. Ряд микробов меняют химич состав лек-в, восст хлорит кальция до хлорида кальция. Причиной микробного обсеменения готовых лек-в м б микробное загрязнение растит лек-ного сырья, воздуха производствен помещений, оборудования, посуды, дистил воды, рук персонала. Микробной порче подвергаются готовые лф: сухие (порошки, сборы), жидкие (микстуры, настои, отвары, капли), мягкие (мази, пасты, шарики, свечи) и стерильные инъекц препараты. Лек-ва с высокой обсемененностью микробами, особенно патогенными, могут вызывать инфекц заб у людей. Из жидких инъекц лф легче всего обсеменяются микробами настои и отвары; при их хранении появл признаки порчи: муть, изменение цвета, пленка, необычный запах. Срок хранения этих препаратов ограничен. Спирт настойки меньше подвержены порче вследствие антимикробного д-вия алкоголя. Сухие порошкообразные в-ва, особенно тальк и крахмал, мягкие лф также подвержены микробному загрязнению. Их микроб порча носит очагов характер и проявл изменен цвета и консистенции в-ва.

34. Исслед лек-ных ср-в, стерилизуемых в процессе производства. Ход исслед, оценка результатов.

Лс для инъекций, глаз капли, мази, плёнки, др лс, в отношении кот имеются соответст указания в нормативно-технич документации (НТД), д б стерильными. Отбор образцов для анализа.Число образцов из каждой серии от 3до40,в зависимости от метода стерилизации, для автоклавированных ср-в - 10. Для исслед лс д б приготовлены в виде р-ров, суспензий или эмульсий. Опред антимикробного д-вия лс. Во избежание неправильной оценки результатов анализа необход опред однократно для каждого наименования лс обладает ли оно антимикробн д-вием. Для опред антимикробного д-вия из ампулы с лс следует внести по 1 мл в 3 пробирки с 10 мл тиогликолевой среды и в 1 пробирку с 10 мл жидкой соево-казеиновой среды или среды Сабуро. Для контроля в 3 пробирки с тиогликолевой средой и в пробирку с 10 мл жидкой соево-казеиновой среды или среды Сабуро вносится по 1 мл стерильной дистил воды. Затем во все пробирки следует внести по 0,1 мл взвеси тест-штамма, содерж 1000 кл в 1 мл. В пробирки с тиогликолевой средой вносятся штаммы Staphylococcus aureus; Bacillus subtilis; Escherichia coli; в пробирки с соево-казеиновой средой или средой Сабуро - Candida albicans. Посевы в тиогликолевой среде инкубируют при 30-35ºС в теч 2 сут, а на соевоказеиновой среде, или среде Сабуро, - при 20-25ºС в теч 3 сут. При отсутст антимикробного д-твия лс в опытных и контрол пробирках должен наблюдаться рост перечисленных тест-микробов. В этом случае можно продолжать исслед и провести прямой посев данного лс на стерильность.

35. Предварительное определение антимикробной активности лс: как проводится, оценка результатов.

Опред антимикробной активности а\б основано на их способности угнетать рост микроорг. Опред проводят методом диффузии в агар на плот пит среде путем сравнения размеров зон угнетения роста тест-штаммов микроорг, кот образуются при испытании р-ров стандартного образца и испытуемого препарата опред концентраций. Метод основан на логарифмич зависимости размеров зон угнетения роста тест-микроорг от концентрации а/б, кот д б линейной. Антимикробная активность а/б выражается в единицах д-вия ЕД или "мкг" на единицу объема препарата. Для бол-ва а/б 1 ЕД или 1 мкг соответст 1 мкг активного в-ва (к-ты или основания); для а/б, имеющих иное колич-ное выражение единицы, соответст указания даются в фармакопейных статьях. При опред антимикробной активности а/б испол стандартные образцы, активность кот уст в соответствии с международными биологич стандартами. При отсутст последних для указанных целей м б испол химич стандартные образцы, антимикробную активность кот рассчитывают нa основании показателей кач-ва, уст физико-химич методами. Антимикробную активность стандартных образцов а/б, не имеющих аналогов в международной коллекции стандартов, рассчитывают также на основании показателей кач-ва, уст физико-химич методами. Стандартные образцы а/б хранятся и испол в соответствии с рекомендациями, указанными на этикетке стандартного образца.

36. Исслед лс, не стерилиз в процессе производства: ход исслед. Опред общего кол-ва бак и грибов.

В отношении лс, не стерилизуемых в процессе производства, проводится испытание на микробиологич чистоту. вкл в себя колич-ное опред жизнеспособных бак и грибов и выявление опред видов микроорг, наличие кот недопустимо в нестерильных лс. проводят в асептич условиях. Лс, обладающие антимикробным д-вием, и консерванты, входящие в состав некот лс, могут подавлять рост отдельных видов микроорг при проведении испытаний. Во избежание неправильной оценки результатов испытания опред д-вие лс в отношении тест-микробов. Для испытания антимикробного д-вия лс, не стерилизуемого в процессе производства, применяют тест-микробы: B.subtilis, B.cereus, E.coli, S.aureus, Salmonella abony, Candida albicans, Aspergillus. Предварительно готовят разведения лс: 1:10, 1:50, 1:100, 1:500, 1:1000. В пробирки с пит средами вносят по 1 мл каждого разведения, в контрол пробирки – по 1 мл стерил дистил воды. Затем во все пробирки вносят по 0,1 мл микробной взвеси тест-штамма. При обнаружении антимикробного д-вия лс устраняют его и после этого производят посев на микробиологич чистоту. При отсут антимикробн д-вия производят прямой посев. Колич-ное опред бак и грибов проводят двухслойным агаровым методом в чашках Петри

Источник: https://studfile.net/preview/16545134/