Материал: steriles

Внимание! Если размещение файла нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам

52

Далее смесь разбавляют оставшимся количеством масла и переносят в стерильный флакон с притертой пробкой.

Эмульсии для парентерального питания – это высокодисперсные гетерогенные системы, содержащие нейтральные жиры в водной среде.

Эмульсии для парентерального питания играют важную роль в организме: они включаются в обменные процессы, являясь при этом богатым источником энергии. По сравнению с другими препаратами они имеют более высокую калорийность при уменьшенном объеме жидкости, осмотическую неактивность, высокое содержание полиненасыщенпых жирных кислот, малую степень выведения субстрата с мочой и калом.

Лекарственные препараты в форме жировых эмульсий не должны проявлять гемолитическую активность, токсичность и пирогенность.

Вмедицинской практике наиболее часто используются такие жировые эмульсии: «Интралипид» (Швейцария), «Венолипид» (Япония), «Липофундин» и др. Широкое применение находят эмульсии антигемолитического действия, содержащие фосфатидилэтаноламин; эмульсии на основе фторуглеродных соединений, используемые для переноса кислорода.

Оптимальный размер частиц в эмульсиях для парентерального питания должен быть не более 0,8 – 1 мкм. Получение эмульсий с заданной величиной частиц осуществляется с помощью методов механического и ультразвукового диспергирования.

Втехнологии эмульсий для парентерального питания важное значение имеет подбор количества эмульгаторов, порядок смешивания компонентов, рН системы и ее температура, выбор метода стерилизации.

Для приготовления жировых эмульсий используют жиры животного

ирастительного происхождения. Предпочтительнее использовать растительные масла (соевое, хлопковое, подсолнечное, кунжутное). В качестве эмульгаторов часто используют фосфолипиды, выделенные из яичного желтка и мозга крупного рогатого скота (фосфатидилхолин, фосфатидилэтаноламин, фосфатидилсерин.). Эмульгаторы подбираются с учетом состава эмульсии и концентрации нейтральных жиров.

Термический метод стерилизации отрицательно сказывается на стабильности и сохранности препаратов. Более приемлемым является метод стерилизации ультрафильтрацией через мембранные фильтры.

13. ХРАНЕНИЕ И ОТПУСК ИНЪЕКЦИОННЫХ ЛЕКАРСТВЕННЫХ ФОРМ

Хранить приготовленные лекарственные препараты для инъекционного введения необходимо при условиях, которые исключают возможность их загрязнения. Места хранения должны быть отдалены от лифтов, санузлов, мест приема и распаковки товаров, использованной тары и оборудованны столами или стеллажами.

Отпуск лекарственных препаратов из аптек лечебнопрофилактическим учреждениям необходимо проводить только при соблюдении режимов, исключающих их загрязнение в процессе транспорти-

53

ровки, то есть в чистую маркированную тару (ящики, легко поддающиеся дезобработке).

Приготовленные в аптеках растворы для инъекций, укупоренные «под обкатку» в соответствии с приказом № 214 МЗ РФ от 16.07.1997г имеют срок годности от 7 до 30 суток, все остальные не более 2 суток.

Лабораторная работа №1

Тема: Приготовление инъекционных растворов без стабилизаторов

1.ЗНАЧИМОСТЬ ИЗУЧАЕМОЙ ТЕМЫ

Инъекционный способ введения лекарств получил в настоящее вре-

мя широкое применение, поскольку этот способ введения, минуя разрушающее действие желудочно-кишечного тракта и печени, обеспечивает быстрое действие лекарств. Введением лекарства непосредственно в кровяное русло или ткани объясняются требования, предъявляемые к лекарственным формам для инъекций: стерильность, стабильность, отсутствие механических включений, апирогенность, а к отдельным инъекционным растворам – изотоничность. Выполнение требований, предъявляемых к инъекционным растворам, предусматривает их обязательное изготовление в асептических условиях. Соблюдение условий асептики, умение проводить стерилизацию приготовленных лекарственных форм, имеет большое значение для практической деятельности провизора – технолога. Значение и навыки практической работы, приобретаемые при изготовлении жидких лекарственных форм, могут быть использованы при изготовлении лекарственных форм данного раздела.

2.ЦЕЛЬ

Уметь изготавливать инъекционные растворы без стабилизаторов,

оценивать их качество на основе теоретических положений, физикохимических свойств лекарственных и вспомогательных веществ соответствии с требованиями НД.

Знать:

–требования, предъявляемые к инъекционным лекарственным формам и способы их обеспечения;

–требования нормативных документов по приготовлению, оценке качества, хранению и оформлению к отпуску инъекционных растворов из аптек;

–способы стерилизации, устройство и правила эксплуатации автоклава.

Уметь:

–рассчитывать количества лекарственных веществ и воды для инъекций;

–зная свойства входящих в пропись ингредиентов выбирать и обосновывать оптимальную технологию инъекционных растров

–проводить основные технологические операции: отвешивание, отмеривание, растворение, фильтрацию, стерилизацию;

–оценивать качество инъекционных растворов;

–оформлять лекарственную форму к отпуску.

54

3. ЛИТЕРАТУРА:

1.Государственная фармакопея РФ / под. ред. М.Д. Машковского. – 10 – е изд. – М. : Медицина, 1968. – 1079 с.

2.Государственная фармакопея РФ / Э.А. Бабаян и др. . – 11 - е изд. – М. : Медицина, 1987. - Вып. I. - 336 с.

3.Муравьев И. А. Технология лекарств : учеб. : в 2 - х т. / И.А. Муравьев. –

М. : Медицина, 1988,т. 2 – C. 397 – 407.

4. Краснюк И.И. Фармацевтическая технология. Технология лекарственных форм : учеб. / И.И. Краснюк, С.А. Валевко, Г.В. Михайлова,. – М. : Академия, 2006 –592с.

5.Краснюк И.И. Практикум по технологии лекарственных форм : учеб. / И.И. Краснюк, Г.В. Михайлова, О.Н. Григорьева. – М. : Академия, 2007

– 432 с.

6.Кондратьева. Т.С. Руководство к лабораторным занятиям по аптечной технологии лекарственных форм / Т. С. Кондратьева, Л.А. Иванова, Ю.И. Зе-

ликсон. – М. : Медицина, 1986. – С. 56 – 61.

7Грецкий В. М. Руководство к практическим занятиям по технологии лекарств / В. М. Грецкий, В. С. Хоменок. – М., 2002. – С. 301.

8.Тихонов А.И. Технология лекарств : учеб., пер. с укр. / А.И. Тихонов, Т.Г. Ярных ; под ред. А.И. Тихонова. – Харьков : НФАУ ; Золотые страницы, 2002. – 704 с.

4. ВОПРОСЫ И ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОКОНТРОЛЯ:

4.1. Контрольные вопросы

1.Характеристика инъекционных растворов и требования, предъявляемые к ним.

2.Вода для инъекций, требования, предъявляемые к ней, способы получения, условия и сроки хранения. Аппаратура, используемая для получения воды для инъекций.

3.Асептика, асептические условия приготовления лекарственных форм, устройство асептического блока.

4.Технологическая схема изготовления инъекционных растворов.

5.Способы стерилизации, используемая аппаратура.

6.Оценка качества инъекционных растворов.

7.Упаковка, оформление к отпуску и хранение инъекционных растворов.

8.Требования приказа МЗ РФ № 309 от 21.10.97. к производственным условиям изготовления инъекционных лекарственных форм.

9.Характеристика инъекционных растворов и требования, предъявляемые к ним.

55

4.2. Задания для выяснения исходного уровня знаний.

1.Студент при изготовлении 5% инъекционного раствора натрия гидрокарбоната укупорил флакон «под обвязку». Правильно ли поступил студент?

2.Для приготовления 40 мл 10% раствора кальция хлорида студент взял 4,0 кальция хлорида и 36 мл воды. Правильно ли студент произвел расчеты?

3.Вода для инъекций хранилась в аптеке 2 суток, можно ли ее использовать для приготовления инъекционных растворов?

4.Студент ввиду отсутствия беззольных фильтров использовал для фильтрования инъекционного раствора капроновую ткань. Правильно ли поступил студент?

5.При изготовлении лекарственной формы студент поместил в подставку 5,0 эфедрина гидрохлорида и 100 мл очищенной воды. Правильно ли поступил студент?

6.Приготовленный раствор гексаметилентетрамина студент простерилизовал при 100°С 30 минут. Оцените действия студента.

7.При изготовлении инъекционного раствора эуфиллина провизортехнолог использовал препарат с содержанием этилендиамина 16%. Правильно ли он поступил?

8.Приготовив 5% раствор никотинамида для инъекций, студент поместил его в стеклянный флакон, укупорил корковой пробкой и обвязал пергаментной бумагой. Правильно ли поступил студент?

9.При стерилизации инъекционного раствора был нарушен режим стерилизации, чтобы получить стерильный раствор студент простерилизовал его второй раз с соблюдением всех условий режима стерилизации. Пра-

вильно ли поступил студент?

10.Алюминиевые колпачки, предназначенные для укупорки инъекционных растворов, студент стерилизовал в биксах при 120°С 8 минут. Оцените действия студента.

11.При оформлении инъекционного раствора к отпуску, студент на этикетке указал состав лекарства. Правильно ли он поступил?

12.Приготовленный 5% раствор норсульфазола до и после стерилизации был подвергнут химиком-аналитиком химическому контролю. Правильно ли он поступил?

13.Студент, при подготовке вспомогательного материала в асептический блок, ватные тампоны и марлевые салфетки стерилизовал в сушильном шкафу при 180°С в течение 45 минут. В чем ошибка студента?

14.Инъекционный раствор натрия хлорида был отпущен из аптеки через 2 суток после его изготовления. Была ли допущена ошибка?

5. САМОСТОЯТЕЛЬНАЯ ВНЕАУДИТОРНАЯ РАБОТА СТУДЕНТОВ ПО ПОДГОТОВКЕ К ЗАНЯТИЮ.

56

5.1.Изучить учебный материал по теме занятия, приведенный в данном пособии и рекомендуемой литературе.

5.2. В дневнике описать по форме рецепты, заданные преподавателем. Правильность выполнения задания № 2 сравнить с эталоном ответа к рецептурной прописи № 1.

1. Возьми: Раствора анальгина 15% – 30 мл Простерилизуй!

Дай. Обозначь. По 1 мл внутримышечно 3 раза в день.

1.1.Rp.: Solutionis Analgini 25% – 30ml.

Sterilisetur!

Da. Signa: По 1 мл внутримышечно 3 раза в день.

1.2.Свойства ингредиентов

Analginum – белый или белый с едва заметным желтоватым оттенком крупноигольчатый кристаллический порошок, легко растворим в воде. (ГФ X, ст.57).

1.3.Ингредиенты совместимы.

1.4.Характеристика лекарственной формы.

Жидкая лекарственная форма для инъекционного применения, представляющая собой истинный раствор, в состав которого входит вещество списка Б.

1.5.проверка доз веществ списка А и Б и норм одноразового

отпуска

Высшие дозы анальгина для внутримышечного введения по ГФ X. В. р. д. – 0,5 В. с. д. – 1,5

В 1 мл 25% раствора анальгина содержится 0,25 Разовая доза 0,25; Суточная доза (0,25 х 3) 0,75

Дозы не завышены. Рецепт выписан правильно, оформлен штампом и печатью лечебно – профилактического учреждения «Для рецептов».

1.6.Паспорт письменного контроля

Лицевая сторона

Оборотная сторона

Дата

№ рецепта

Анальгина 7,5

Aguae pro injectionibus 24,9

Воды для инъекций

Analgini 7,5

 

30 – (7,5 х 0,68) = 24,9 мл

 

 

 

0,68 – коэффициент увеличения

Обьѐм 30ml

 

объема анальгина.

Простерилизовано

 

 

Приготовил

 

 

Проверил

(подпись)

 

Источник: https://studfile.net/preview/16495170/